Készítette: Simon Andrea.  Anderson & Domsch, 1978  A mikrobiális biomassza mérésére használatos közelít ő módszerek egyike.  Alkalmazható savanyú.

Slides:



Advertisements
Hasonló előadás
Nitrogén vizes környezetben
Advertisements

A vízben oldott oxigén meghatározása
A szabályozott szakasz statikus tulajdonsága
Alkalmazott kémia Növénytermesztő és ökológiai gazdálkodó felsőfokú szakképzésben tanulóknak Készítette: Erdeiné dr. Kremper Rita
A DNS „ujjlenyomat” vizsgálat
Klímaváltozás hatása a talajlégzésre
Kiskunhalas környékének talajai
Kémia Hornyák Anett Neptun-kód: XIGGLI
Környezettechnika Modellezés Biowin-nel Koncsos Tamás BME VKKT.
Szénhidrogén technológia és katalízis kurzushoz Jellemzők-1_2
A talajban lévő mobilis foszfor extrakciója
A talaj összes nitrogén tartalmának meghatározása
A talaj mikrobiális biomassza meghatározása fumigációs módszerekkel.
1 terv (régi szint a szürke): x 4 =  x 1 x 2 x 5 =  x 1 x 3 x 6 =  x 2 x 3 x 7 =x 1 x 2 x 3 1. példa: Ina Tile.
KOMETABOLIZMUS. A fogalom tisztázása Régóta ismert tény, hogy a mikroorganizmusok képesek átalakítani szerves vegyületeket, de a termék felhalmozódik.
Alkalmazott kémia Növénytermesztő és ökológiai gazdálkodó felsőfokú szakképzésben tanulóknak Készítette: Erdeiné dr. Kremper Rita
Mindenki az egyenes illesztést erőlteti. Kell olyan ábra ahol 1 ismeretlen pont van Kell olyan ábra ami a görbék párhuzamos lefutását mutatja Kell olyan.
Adatgyűjtés, mérési alapok, a környezetgazdálkodás fontosabb műszerei
Mérések ellipszométerrel - Fehérjerétegek vizsgálata
GTPáz aktivitás mérése gyakorlat Lévay Magdolna
Kulcs-zár illeszkedés (Emil Fischer)
Többszörös regresszió I. Többszörös lineáris regresszió
Többszörös regresszió I. Többszörös lineáris regresszió miért elengedhetetlen a többszörös regressziós számítás? a többszörös regressziós számítások fajtái.
MIÉRT NEM MÉRHETŐ? E + S P + E mol/dm3!!!!
Készítette: Mészáros Ágnes
FERMENTÁCIÓS RENDSZEREK LEVEGŐELLÁTÁSA
Nemzetközi Pi-nap π.
A talajtermékenység növelésének új, lehetőségei napjainkban Dr. Biró Borbála 1, P. Angerer Ildikó 1 Magyar Tudományos Akadémia, Talajtani és Agrokémiai.
energetikai hasznosítása III.
STRONCIUM-ION MEGKÖTŐDÉSÉNEK KINETIKÁJA TERMÉSZETES AGYAGMINTÁKON
Készítette: B ő cs-Kovács Renáta Dénes Dorina. ×Napsugárzás Fontos, hogy télen is érjen napfény, hiszen e nélkül a D-vitamin börben tárolt provitaminja.
Szükségünk lesz valamilyen spreadsheet / táblázat kezelő programra
TPH (Összes ásványi szénhidrogén) Fogalmak Vizsgálati lehetőségek
Példa: a Streeter-Phelps vízminőségi modell kalibrálása
Matematikai eszközök a környezeti modellezésben
A talaj oldott szerves szén (DOC) tartalmának meghatározása Készítette: Dudás Kata.
Vegyi anyagok hatása talaj szénanyagcseréjére Forrás: OECD 217 Varga Judit.
Talajmikroorganizmusok vizsgálata: széntranszformációs teszt OECD 217
Enzimaktivitási módszerek: celluláz-aktivitás mérése
Szerves talajszennyező anyagok fázisok közötti megoszlása és biológiai hozzáférhetősége Budapesti Műszaki és Gazdaságtudományi Egyetem Mezőgazdasági Kémiai.
Talajsterilezés Herman Edit. Sterilitás definíciója Külső behatás következtében kialakuló olyan állapot, amiben a vizsgált terület teljesen mikroba-mentes.
Enzimvizsgálati módszerek Kitináz aktivitás mérése
Arginin ammonifikáció Készítette: Vas Nóra. Arginin ammonifikáció Ammonifikáció mérésére szolgáló labor kisérlet Ammonifikáció fontossága:  Ökoszisztémák.
Talajvizsgálat foszfolipidek alapján Készítette: Ladányi Márta (A170R5) Talajvédelem című tárgy keretében (BMEEOGTAKM1)
Diamino- pimelinsav meghatározása Készítette: Kelényi Janka.
Nitrifikáció vizsgálata talajban
Készítette: Bukri Gergely Budapesti Műszaki és Gazdaságtudományi Egyetem 2011.
Lipopoliszacharidok meghatározása talajból
A muraminsav meghatározása talajból Készítette: Bolla Zsuzsanna Környezetmérnök MSc.
Lipáz enzimaktivtás mérése
Talajvizsgálat kataláz aktivitás méréssel
FDA hidrolízis aktivitási teszt
Obligát anaerob mikroorganizmusok felszaporítása.
Mintavétel talajból, talajminták tárolása
Készítette: Cserdi Péter Környezetmérnök szakos hallgató Szerves foszfor extrakciója talajból.
ATP (Adenozin-trifoszfát) meghatározása talajban - kénsavas, foszfátos extrakciós eljárással Tóth Anna Szilvia.
OECD GUIDELINE FOR THE TESTING OF CHEMICALS Soil Microorganisms: Carbon Transformation Test OECD ÚTMUTATÓ VEGYI ANYAGOK TESZTELÉSÉRE Talaj Mikroorganizmusok:
Növény monitoring Ambrus Á., Györfi L., Vásárhelyi A. Az élelmiszerekben elforduló növényvéd-szermaradékok élelmiszerbiztonsági megítélése 5/2002. (II.
Un mare monument natural A boliviai Salina de Uyuni a világ legnagyobb só sivataga mely egy hatalmas természetes tükört alkot. Az es ő s évszakban.
A „Pálinkamester képzés” hallgatóinak laborlátogatása a WESSLING-ben Budapest A pálinka sikerének támogatása speciális laboratóriumi vizsgálatokkal.
Készítette: Somogyi Gábor
MSc 2012 ENZIMES ÖSSZEFOGLALÓ Egy egység az az enzim mennyiség, amely 1  mol szubsztrátot alakít át vagy 1  mol terméket képez 1 perc alatt adott reakció.
Puskás Ágnes: Vízszennyező anyagok élettani hatásának vizsgálata biológia szakkörön.
ELISA gyakorlati menete Gyakorlat, amivel bizonyíthatjuk a HIV fertőzést anti-HIV antitestek bizonyítéka a vérben.
Környezetvédelmi analitika
Készítette: Szenyéri veronika
β-glükozidáz aktivitás mérése talajban
A talajvízkészlet időbeni alakulásának modellezése
Mintavétel talajból, talajminták tárolása
PHB szintézise (PolyHydroxyButyrate)
Előadás másolata:

Készítette: Simon Andrea

 Anderson & Domsch, 1978  A mikrobiális biomassza mérésére használatos közelít ő módszerek egyike.  Alkalmazható savanyú és nagy mennyiség ű szerves anyagot tartalmazó talajok esetében is.

 Jenkinson & Powlson, kloroform fumigációs inkubációs (CFI) módszer  Anderson & Domsch, 1978 – az el ő z ő módszer alapján közvetlenül becsülhet ő a mikrobiális biomassza C-mennyisége  Van De Werf & Verstrade (1987) - a glükózra adott reakció csak a mikrobiális biomassza aktív részét érinti  West & Sparling (1986) változtatásokat javasoltak a SIR módszerben (pl. glükóz-oldat használata)

A szubsztrát indukált respiráció (SIR): a telítési koncentrációban jelenlev ő könnyen hasznosítható szubsztrát (pl. glükóz) hatására a mikroorganizmusok által adott respirációs válasz.  A respirációs válasz arányos az aktuálisan jelenlev ő mikrobiális biomassza nagyságával, így megfelel ő kalibráció esetén a talaj mikrobiális biomassza becslésére használható.  A módszer az összes mikrobiális biomasszán belül az aktív és ugyanakkor „glükóz-reagáló” (glucose responsive) populációt méri.  A mikrobiális biomassza nagyságának ismerete lényeges, mert az a növényi tápelemek (N, P, S) fontos átmeneti raktára, valamint több megfigyelés szerint a talajban történ ő változások indikátoraként figyelmeztethet a kedvez ő tlen folyamatokra.

A szubsztrát (pl. glükóz) talajhoz történ ő hozzáadása után mért respirációs választ az O 2 fogyasztás vagy a CO 2 képz ő dés alapján lehet mérni. Bár az O 2 -fogyasztás mérése felel meg egyértelm ű en az aerob respirációnak, a képz ő dött CO 2 mérésével a kisebb háttérkoncentráció miatt nagyobb pontossággal lehet kimutatni a változásokat.

1. El ő készítés:  A talajokat el ő z ő leg szitáljuk.  Meghatározzuk a minták talajnedvességét.  Írjuk rá a minta azonosító kódokat az inkubációs edényekre.  Minden mintából legalább 3 ismétlést készítünk az inkubációs edényekbe. Az edény térfogata legalább 15-szöröse legyen a bemért minta térfogatának. (Korábban 150 ml szérumpalackot használtak 20 g talajhoz, újabban 25 ml edényeket 2 g talajhoz)  Állítsuk be a talajnedvességet a víztartó képesség kb %-ára.

2. El ő -inkubáció:  Az edények tetejét takarjuk le parafilmmel.  Az edényeket helyezzük be 25 o C termosztátba 3 napra. 3. Az alkalmazandó glükóz mennyiség meghatározása:  Vegyük fel a 1, 2, 4, 6, 8 mg glükóz g -1 talaj sorozatra adott respirációs választ, és válasszuk azt a glükóz koncentrációt, ami felett már a respiráció biztosan nem növekszik tovább.

4. Glükóz kezelés :  A talajmintát tartalmazó edényeket jól szell ő ztessük ki, majd az el ő z ő pontban meghatározott glükóz mennyiséget adjuk a talajhoz. 5. Inkubáció:  A glükóz hozzáadás után várjunk néhány percet, majd zárjuk le az edényeket szeptummal, és inkubáljuk 22 o C-on meghatározott ideig (2-4 óra) 6. Mérés:  Az edényb ő l gáztömör (pl. Hamilton) fecskend ő vel vegyünk gázmintát, és mérjük meg annak CO 2 tartalmát gázkromatográffal.

 A rövid inkubációs id ő (2-4 óra) alatti szaporodás, vagyis új biomassza szintézis jelentéktelen mérték ű.  A szubsztrátot olyan mennyiségben kell alkalmazni, hogy ne legyen limitáló.

Ha elfogadjuk, hogy a SIR a metabolikusan aktív glükóz hasznosító mikrobiális biomassza kvantitatív indikátora, akkor feltételezhet ő, hogy a szezonálisan változó ökológiai tényez ő k befolyásolhatják azt. Els ő sorban három tényez ő nek lehet kitüntetett szerepe: – talajnedvesség - WARDLE és PARKINSON (1990) – talajh ő mérséklet - KAISER és HEINEMEYER (1993) – hasznosítható szubsztrát mennyisége - PATRA (1990)

1990-ben az ISO TC 190-es, talajmin ő séggel foglalkozó nemzetközi bizottsága szabványként elfogadta a szubsztrát indukált respirációt:  ISO : Talajmin ő ség. A talaj mikrobiális biomasszájának meghatározása. 1. rész: Szubsztrát indukált respirációs módszer

 SZILI-KOVÁCS T., Szubsztrát indukált respiráció a talajban. Agrokémia és Talajtan –214  KAISER, E. A. et al., Evaluation of methods to estimate the soil microbial biomass and the relationship with soil texture and organic matter. Soil Biol. Biochem –  Alef K. and Nannipieri P. (Editors): Methods in Applied Soil Microbiology and Biochemistry, Academic Press Limited, London, 1995