1 Polimeráz-láncreakció termékeinek vizsgálata agaróz gélelektroforézissel.

Slides:



Advertisements
Hasonló előadás
47. kísérlet A reakciósebesség vizsgálata
Advertisements

A Szállítási feladat megoldása
A DNS „ujjlenyomat” vizsgálat
OXIDOK TESZT.
Orvosi széntabletta adszorpciójának vizsgálata ammóniával
10. Kísérletek acetilénnel 1. Az acetilén előállítása
„A modern természettudományos szemléltetés feltételeinek megteremtése Kisvárdán a Dr. Béres József Laboratórium korszerűsítésével, működtetésével” TÁMOP.
KŐVIRÁG 6.
Gázok előállítása és reakciójuk Lugol-oldattal
Élvezze a professzionális kozmetikai arcápolás eredményeit otthonában
Nem felel meg az szabálynak
Nyomtatás.
14.Aceton, víz és benzin azonosítása
MON-TEK GENERÁTOR használati útmutató A Mon-Tek Generátor átvétele 1. A Mon-Tek Mo99/Tc99 Generátor szállítása Type A konténerben történik, magassága 41.
A polimeráz láncreakció Gurbi Bianka március 4. Emelt Biotechnológiai Számítások.
Intervallum.
Hálózat összeállítási feladat 1 Készíts egy hálózatot. A hálózatban legyen 4 PC, fix IP címmel. Legyen egy DNS szerver, és működjön a név feloldás is.
GTPáz aktivitás mérése gyakorlat Lévay Magdolna
Gélelektroforézis Molina Csaba.
A gélelektroforézis Alkalmazása: különböző molekulák (nukleinsavak, fehérjék) -méret szerinti elválasztását, -detektálását -mennyiségének meghatározását.
1. Kísérletek kén-hidrogénnel
23. Szappanfőzés.
Reakciótípusok.
31. Szappan habzása vízben, savas és lúgos oldatban
33. Tojásfehérje vizsgálata
Sósavoldat meghatározása. Szükséges Eszközök: fecskendő védőszemüveg gumikesztyű Anyagok: fenolftaleines NaOH- oldat (0,1 mol/dm 3 ) ismeretlen koncentrációjú.
32. Folyadékok elegyedése, vizsgálata jód oldódásával
Vízkeménység vizsgálata szappanforgáccsal
5. Fenol és ecetsav megkülönböztetése NaHCO 3 -tal.
49. kísérlet Az ecetsav reakciói
Magnézium-szulfát- és alumínium-szulfát reakciói
Citromsav, Nátrium-acetát és szőlőcukor azonosítása
48. kísérlet Sók azonosítása vizes oldatuk kémhatása alapján
19. AgNO3-, Na2CO3- és NaOH- oldat azonosítása
Szükséges Anyagok: rézforgács, 60-65%-os salétromsavoldat,
35. Sósav és NaOH-oldat azonosítása pH-jának becslése alapján
Arginin ammonifikáció Készítette: Vas Nóra. Arginin ammonifikáció Ammonifikáció mérésére szolgáló labor kisérlet Ammonifikáció fontossága:  Ökoszisztémák.
Nitrifikáció vizsgálata talajban
Lipáz enzimaktivtás mérése
Nyomtatók Segédanyag 9. osztályosok számára Készítette: Dobi Attila,
Gyakorlati képzés: Genetikai variációk igazolása PCR segítségével.
DNA-Fingerprint1 Polimeráz-láncreakció termékeinek vizsgálata agaróz gélelektroforézissel.
PowerPoint 7. Évfolyam Formázások. Mentés A feladatot mentsük el a saját mappánkba „7_2_ppt_SajátNév” néven (ahol a SajátNév a saját nevünk helyesen leírva,
Kémia Tananyagfejlesztés.
Bekezdések formázása 1..
Gazdasági informatikus - Szövegszerkesztés 1 Bekezdések formázása 3.
Gazdasági informatikus - Szövegszerkesztés 1 Bekezdések formázása 2.
Bekezdések formázása 1..
Páciens fertőzések eredetének meghatározása. Összefüggés A fertőzött beteget a kórházban ápolták egy műtétet követően. Az ápolás során minden nap más.
Bakteriális azonosítási folyamat
Antibiogram vizsgálat baktériumtörzsön
‘08 bevallás önellenőrzése, helyesbítése UJTB program esetén
VÁKUUMTECHNIKAI LABORATÓRIUMI GYAKORLATOK Bohátka Sándor és Langer Gábor 11. CSIGAVONALAS (SCROLL) SZIVATTYÚ TISZTÍTÁSA TÁMOP C-12/1/KONV
Molekuláris klónozás a gyakorlatban. CRISPR/Cas rendszerek Adaptív bakteriális immunitás Idegen nukleinsavak ellen ( pl. vírusok) Ezek integrálása a genomba,
SDS-PAGE Kísérleti protokoll Címkézzen meg 1,5 ml-es zárható tetejű mikrocsöveket a halminták neveivel. 1. Minta előkészítés.
Immunoprecipitation Gyakorlati munka I. rész. Kísérleti protokoll Protokoll.
ELISA gyakorlati menete Gyakorlat, amivel bizonyíthatjuk a HIV fertőzést anti-HIV antitestek bizonyítéka a vérben.
Molekuláris biológiai módszerek
Polyacrylamid-Gél Elektroforézis (PAGE)
KÓRHÁZI ACINETOBACTER BAUMANNII TÖRZSEK JELLEMZÉSE
A GFP in vitro génexpressziója
Proteomika, avagy a fehérjék „játéka”
Új molekuláris biológiai módszerek
Tisztítási próba poliakrilamid gélelektroforézissel
Tejsav előállítása Lactobazillus Delbrueckii által
A PLA előállítása és lebomlása
GYAKORLATI ÚTMUTATÓ A TESZTELÉS FOLYAMATA
Szegedi Tudományegyetem
PHB szintézise (PolyHydroxyButyrate)
Előadás másolata:

1 Polimeráz-láncreakció termékeinek vizsgálata agaróz gélelektroforézissel

2 1. A gélkamra előkészítése

3 1.1 Rakjunk 1 g agarózt és 33 ml TAE- Bufferhoz egy 100 ml-es Erlenmeyer lombikba! 1.2 Melegítsük az elegyet melegítőben, rázzuk meg, majd ismét melegítsük egy rövid ideig! 1.3Hagyjuk, hogy az agaróz oldat 55°C-ra hűljön, majd öntsük ki a gélt!

DNA-Fingerprint4

5 1.4A gél megszilárdulása után vegyük ki a fém rudakat az elektrofrézises kamrából! 1.5Töltsük 270 ml TAE-Buffer oldatot az elektrofrézises kamrába, hogy befedje a gélt! 1.6Húzzuk ki a fésűt! 1. A gélkamra előkészítése

6 2. Minták előkészítése a gélelektrofrézishez

7 2.1Vegyük ki a 6 darab PCR kémcsövet a melegítőböl. 2.2 Helyezzük a PCR kémcsöveket a 6 darab kijelölt kémcső adapterbe!

DNA-Fingerprint8

9 2.3Rakjunk pipettával 10 µl Orange G festéket (LD) mind a 6 darab PCR kémcsőbe, majd az ujjaink segítségével gyengén rázzuk össze, hogy ez által elkeveredjenek! 2. Minták előkészítése a gélelektrofrézishez

10 3. A gélben lévő rések kitöltése

11 3. A gélben lévő rések kitöltése 3.1 Töltsük ki a gélben lévő réseket balról- jobbra ezekkel: - 20 µl MWR (molekuláris súlyszabályozó) - 20 µl -GMO kontrol PMM-el (1) - 20 µl -GMO kontrol GMM-el (2) - 20 µl ételminta (T) PMM-el (3) - 20 µl ételminta (T) GMM-el (4) - 20 µl +GMO-DNS PMM-el (5) - 20 µl +GMO-DNS GMM-el (6)

12 4. Elektrofrézis folyamatának végbemenetele

13

14 4. Elektrofrézis folyamatának végbemenetele 4.1 Zárjuk be az elekrofrézises kamrát és inditsuk el a folyamatot 120 V feszültségen! 4.2 Állítsuk meg a gélelektrofrézist, mikor a Orange G színű szennyeződés 1 cm-re megközelíti a gél végét!

15 5. DNS összetevők láthatóvá tétele

16 5. DNS összetevők láthatóvá tétele 5.1 Nyissuk ki az elektrofrézises kamrát és vegyük ki a gélt! Vigyázzunk, hiszen a gél nagyon csúszós! (A TAE buffert később is fel tudjuk használni, így azt is tegyük el)! 5.2 Rakjuk a gélt egy festékes tálcára majd adjunk 70 ml festékes oldatot (50x) aztán 2 percen keresztül gyengén rázzuk!

perc után távolítsuk el a festékes oldatot! Majd szabaduljunk meg a maradék szennyeződéstől forró csapvíz (40-50°C) segítségével: 20 percen keresztül tisztítsuk! Mind eközben gyengén rázd! Rakjuk el a használt festéket a későbbi felhasználás érdekében! 5. DNS összetevők láthatóvá tétele

18 6. Kiértékelés

19 6. Kiértékelés 6.1 Azonosítsuk a DNS részeket a gélben a molekuláris súlyszabályozó segítségével! Vizsgáljuk meg ezeken az értékeken: 100 bp, 200 bp, 500 bp, 700 bp, 1000 bp!

Genetikailag módosítottak e az életmintánk? Beszélgessünk egy kicsit az eredményekről! 6. Kiértékelés