Bakteriális azonosítási folyamat

Slides:



Advertisements
Hasonló előadás
47. kísérlet A reakciósebesség vizsgálata
Advertisements

Az élelmiszerek mikrovilága
A DNS „ujjlenyomat” vizsgálat
Használati útmutató a DRYTEC
Orvosi széntabletta adszorpciójának vizsgálata ammóniával
Élősejtszám meghatározás
„D” modul: Mikrosebészet Célok
Nyomtatás.
Szükséges Eszközök: • kémcsőtartó, 3db kémcső, vegyszeres kanál, cseppentő Anyagok: • tojásfehérje, szilárd konyhasó, tömény sósav, tömény salétromsav,
14.Aceton, víz és benzin azonosítása
MON-TEK GENERÁTOR használati útmutató A Mon-Tek Generátor átvétele 1. A Mon-Tek Mo99/Tc99 Generátor szállítása Type A konténerben történik, magassága 41.
Az ammónia oldat és a sósav – szökőkút kísérlet
4. Az aceton és a formalin megkülönböztetése
Képes bemutató.
Készítette: Kozma Réka
HTML oldal felépítése Készítette: Pataki Arnold
Élősejtszám meghatározás
1. Kísérletek kén-hidrogénnel
23. Szappanfőzés.
31. Szappan habzása vízben, savas és lúgos oldatban
Sósavoldat meghatározása. Szükséges Eszközök: fecskendő védőszemüveg gumikesztyű Anyagok: fenolftaleines NaOH- oldat (0,1 mol/dm 3 ) ismeretlen koncentrációjú.
40. Kén melegítése.
Vízkeménység vizsgálata szappanforgáccsal
49. kísérlet Az ecetsav reakciói
Szilárd AgNO 3, ZnSO 4, kihevített CuSO 4 azonosítása.
25. Nátrium-karbonát, kálium-bromid és kalcium-karbonát azonosítása
Citromsav, Nátrium-acetát és szőlőcukor azonosítása
48. kísérlet Sók azonosítása vizes oldatuk kémhatása alapján
Szükséges Anyagok: rézforgács, 60-65%-os salétromsavoldat,
35. Sósav és NaOH-oldat azonosítása pH-jának becslése alapján
Optikai rács kialakítása holográfiával
Enzimvizsgálati módszerek Kitináz aktivitás mérése
Arginin ammonifikáció Készítette: Vas Nóra. Arginin ammonifikáció Ammonifikáció mérésére szolgáló labor kisérlet Ammonifikáció fontossága:  Ökoszisztémák.
Nitrifikáció vizsgálata talajban
Lipáz enzimaktivtás mérése
Talajvizsgálat kataláz aktivitás méréssel
Cianobaktériumok izolálása és megszámlálása Készítette: Horváth Attila.
Obligát anaerob mikroorganizmusok felszaporítása.
ATP (Adenozin-trifoszfát) meghatározása talajban - kénsavas, foszfátos extrakciós eljárással Tóth Anna Szilvia.
Tömény salétromsav és kénsav azonosítása réz segítségével
Adjunk hálát az Úrnak, aki meghalt és feltámadt
A Cardano-féle rács.
Gyakorlati képzés: Genetikai variációk igazolása PCR segítségével.
DNA-Fingerprint1 Polimeráz-láncreakció termékeinek vizsgálata agaróz gélelektroforézissel.
PowerPoint 7. Évfolyam Formázások. Mentés A feladatot mentsük el a saját mappánkba „7_2_ppt_SajátNév” néven (ahol a SajátNév a saját nevünk helyesen leírva,
Készítette: Turócziné Kiscsatári Nóra
Foucauld atya imája.
Kémia Tananyagfejlesztés.
Faith in Nature az igazi természetes szépség. A Faith in Nature bőrápoló termékcsalád minden tagja hipoallergén és parabénektől (kőolaj származékoktól)
8. osztály Egyszerű képletek. Első feladat  Adjunk meg egész számokat, majd számítsuk ki az összegüket, különbségüket és hányadosukat.
Páciens fertőzések eredetének meghatározása. Összefüggés A fertőzött beteget a kórházban ápolták egy műtétet követően. Az ápolás során minden nap más.
Antibiogram vizsgálat baktériumtörzsön
1 Polimeráz-láncreakció termékeinek vizsgálata agaróz gélelektroforézissel.
SDS-PAGE Kísérleti protokoll Címkézzen meg 1,5 ml-es zárható tetejű mikrocsöveket a halminták neveivel. 1. Minta előkészítés.
Immunoprecipitation Gyakorlati munka I. rész. Kísérleti protokoll Protokoll.
TízesEgyesA szám Eredeti10-xx10(10-x)+x=100- 9x Felcseréltx10-x10x+10-x=9x+10 2(100-9x) = 9x x = 9x = 27x =27x 7 = x A szám: 37.
Gyakorlat. postafiók készítése: 1. Nyissuk meg a oldalt! 2. Válasszuk a Fiók létrehozása gombot! 3. Töltsük ki az űrlapot! 4. A nyitólap.
ELISA gyakorlati menete Gyakorlat, amivel bizonyíthatjuk a HIV fertőzést anti-HIV antitestek bizonyítéka a vérben.
A GFP in vitro génexpressziója
A hanyag háziasszony története
Tisztítási próba poliakrilamid gélelektroforézissel
Tejsav előállítása Lactobazillus Delbrueckii által
A PLA előállítása és lebomlása
Mellkascsapolás Beavatkozás célja a mellhártya (PLEURA) között lévő üregben felszaporodott folyadék lecsapolása.
GYAKORLATI ÚTMUTATÓ A TESZTELÉS FOLYAMATA
Biohidrogén előállítása
Világ legszebb popói verseny
A normális eloszlásból származó eloszlások
Mikrobiológiai üzemanyag cella összeszerelése
PHB szintézise (PolyHydroxyButyrate)
Előadás másolata:

Bakteriális azonosítási folyamat Első rész: kicsinyített API rendszer elkészítése

Rendelkezésre álló eszközök Fiziológiás steril vízcső (5 mL) Desztillált víz Olaj Agar Petri csésze API rendszer dobozzal és fedéllel Sterilizálatlan pipetta Steril pipetták

1. Bakteriális szuszpenzió előállítása

1.1. 1 Egy steril oltókaccsal tegye a baktérium tenyészetet az agar petri csészébe! Figyelem! A minta fertőtlenítve megjelent a Bunsen égő körül!

1.2. Tegye a szuszpenziót a baktérium tenyészettel egy steril kémcsőbe, amiben fiziológiás víz (5mL) van! A vízben dörzsölje az oltókacsot a kémcső oldalához, hogy eloszlassa a baktériumokat! Figyelem! A minta fertőtlenítve megjelent a Bunsen égő körül.

S 1.3 Homogenizája az oldatot kézi rázással és írjon egy « S » betűt a kémcsőre!

2. Az API rendszer elkészítése

2.1. A doboz alját töltse fel desztillált vízzel úgy, hogy befedje az üregeket! 2.2. Körkörös mozdulatokkal oszlassa el a vizet az üregekben! Ezután távolítsa el a felesleges vizet a sterilizálatlan pipettával!

2.3. Egy csipesszel tegye az API rendszert a dobozba! 2.4. Zárja le a fedelével és írja rá az asztala számát a doboz műanyag címkéjére!

2. Az API rendszer feltöltése

Bevezetés Csésze Mikrokémcső Minták: Nem aláhúzott teszt Bekeretezett teszt

3.1. Nyissa fel a dobozt és a tetejét helyezze úgy el, hogy a rendszer ferde formát vegyen fel!

Figyelem! A minta fertőtlenítve megjelent a Bunsen égő körül. 3.2 Szívjon fel 2 mL-t az S-sel jelölt szuszpenzióból egy steril pipettával! S Figyelem! A minta fertőtlenítve megjelent a Bunsen égő körül.

3.3 Töltse fel az összes tesztet a szuszpenzióval a következő szabályok szerint: Az aláhúzott vagy nem aláhúzott tesztekhez (például : ONPG vagy ADH), csak a mikrokémcsövet töltse meg! A bekeretezett teszthez (például CIT), töltse meg a mikrokémcsövet és a kis csészét! Csésze Mikrokémcső

3.4 Egy steril pipettával adjon olajat az 5 aláhúzott teszt csészéjébe (ADH, LDC, ODC, H2S, URE)! Csésze

3.5 Zárja be a dobozt és inkubálja 37°C-on 16 órán keresztül! API doboz az inkubátorban

4. Eredmények kiértékelése A második napon, az inkubálás után azonosítsa a baktériumot! (második rész)