Arginin ammonifikáció Készítette: Vas Nóra. Arginin ammonifikáció Ammonifikáció mérésére szolgáló labor kisérlet Ammonifikáció fontossága:  Ökoszisztémák.

Slides:



Advertisements
Hasonló előadás
A vízben oldott oxigén meghatározása
Advertisements

A DNS „ujjlenyomat” vizsgálat
A víz oxigéntartalmának meghatározása
„A modern természettudományos szemléltetés feltételeinek megteremtése Kisvárdán a Dr. Béres József Laboratórium korszerűsítésével, működtetésével” TÁMOP.
A muraminsav (muramic acid) Készítette: Bolla Zsuzsanna Környezetmérnök MSc.
A talajban lévő mobilis foszfor extrakciója
Szabad aminosavak termelésének kimutatása a talajmikroorganizmusok tenyészetében.
A talaj összes nitrogén tartalmának meghatározása
A talaj összes szulfát-tartalmának meghatározása
A talaj mikrobiális biomassza meghatározása fumigációs módszerekkel.
Mindenki az egyenes illesztést erőlteti. Kell olyan ábra ahol 1 ismeretlen pont van Kell olyan ábra ami a görbék párhuzamos lefutását mutatja Kell olyan.
NH4OH Szalmiákszesz Ammónium-hidroxid
SÓOLDATOK KÉMHATÁSA PUFFEROLDATOK
Adatgyűjtés, mérési alapok, a környezetgazdálkodás fontosabb műszerei
13.Óra AZ OLDATOK TÖMÉNYSÉGE
ELEKTROKÉMIAI ALAPFOGALMAK
Andráskó Melinda, Huszár László, Korpás Gábor, Környei József
AP-CITROX kémiai dekontaminációs technológia nem-regeneratív változatával, az üzemi értéket meghaladó dekontamináló oldat áramlási sebességgel (1,69 m/s)
15. Alumínium, magnézium és vas azonosítása
23. Szappanfőzés.
Oldáshő.
31. Szappan habzása vízben, savas és lúgos oldatban
Sósavoldat meghatározása. Szükséges Eszközök: fecskendő védőszemüveg gumikesztyű Anyagok: fenolftaleines NaOH- oldat (0,1 mol/dm 3 ) ismeretlen koncentrációjú.
49. kísérlet Az ecetsav reakciói
Magnézium-szulfát- és alumínium-szulfát reakciói
Citromsav, Nátrium-acetát és szőlőcukor azonosítása
48. kísérlet Sók azonosítása vizes oldatuk kémhatása alapján
A sósav és a kloridok 8. osztály.
Analitika gyakorlat 12. évfolyam
A talaj szervetlen nitrogén-tartalmának meghatározása
Enzimaktivitási módszerek: celluláz-aktivitás mérése
Talajsterilezés Herman Edit. Sterilitás definíciója Külső behatás következtében kialakuló olyan állapot, amiben a vizsgált terület teljesen mikroba-mentes.
Enzimvizsgálati módszerek Kitináz aktivitás mérése
Diamino- pimelinsav meghatározása Készítette: Kelényi Janka.
Ureáz aktivitás mérése
Nitrifikáció vizsgálata talajban
Készítette: Bukri Gergely Budapesti Műszaki és Gazdaságtudományi Egyetem 2011.
Lipopoliszacharidok meghatározása talajból
Adenozin-trifoszfát az ATP (adenozin-trifoszfát) minden élő szervezetben megtalálható allosztérikus effektorként, csoport-hordozó koenzimként és szubsztrátként.
A muraminsav meghatározása talajból Készítette: Bolla Zsuzsanna Környezetmérnök MSc.
Lipáz enzimaktivtás mérése
Talajvizsgálat kataláz aktivitás méréssel
FDA hidrolízis aktivitási teszt
Cianobaktériumok izolálása és megszámlálása Készítette: Horváth Attila.
Obligát anaerob mikroorganizmusok felszaporítása.
Mintavétel talajból, talajminták tárolása
Készítette: Simon Andrea.  Anderson & Domsch, 1978  A mikrobiális biomassza mérésére használatos közelít ő módszerek egyike.  Alkalmazható savanyú.
Készítette: Cserdi Péter Környezetmérnök szakos hallgató Szerves foszfor extrakciója talajból.
Nitrogén mineralizáció
ATP (Adenozin-trifoszfát) meghatározása talajban - kénsavas, foszfátos extrakciós eljárással Tóth Anna Szilvia.
A talaj összes szénhidrát- tartalmának meghatározása Készítette: Markó István A8WWQQ.
OECD GUIDELINE FOR THE TESTING OF CHEMICALS Soil Microorganisms: Carbon Transformation Test OECD ÚTMUTATÓ VEGYI ANYAGOK TESZTELÉSÉRE Talaj Mikroorganizmusok:
Halogének I. Kálium-klorátos gyújtókeverék
Gyakorlati képzés: Genetikai variációk igazolása PCR segítségével.
DNA-Fingerprint1 Polimeráz-láncreakció termékeinek vizsgálata agaróz gélelektroforézissel.
Felszíni vizek minősége
Első rész III. kationosztály elemzése 2011 Készítette Fogarasi József
Bakteriális azonosítási folyamat
1 Polimeráz-láncreakció termékeinek vizsgálata agaróz gélelektroforézissel.
SDS-PAGE Kísérleti protokoll Címkézzen meg 1,5 ml-es zárható tetejű mikrocsöveket a halminták neveivel. 1. Minta előkészítés.
Immunoprecipitation Gyakorlati munka I. rész. Kísérleti protokoll Protokoll.
A GFP in vitro génexpressziója
Tisztítási próba poliakrilamid gélelektroforézissel
Tejsav előállítása Lactobazillus Delbrueckii által
A PLA előállítása és lebomlása
β-glükozidáz aktivitás mérése talajban
Méréstechnika 1/15. ML osztály részére 2017.
Mintavétel talajból, talajminták tárolása
Analitikai számítások a műszeres analitikusoknak
PHB szintézise (PolyHydroxyButyrate)
Előadás másolata:

Arginin ammonifikáció Készítette: Vas Nóra

Arginin ammonifikáció Ammonifikáció mérésére szolgáló labor kisérlet Ammonifikáció fontossága:  Ökoszisztémák nitrogén ellátását ez a folyamat biztosítja a nitrogén fixálás mellett

Mérés elve Ammónia meghatározáson alapszik a módszer, miután a minta 3 órán át volt 30°C- on inkubátorban argininnel.

Felhasznált eszközök Centrifuga Centrifugáláshoz alkalmas lombik (12 ml) 30 °C-ra állítható inkubátor

Felhasznált oldatok Agrinin oldat  100 mg L-agrinin-t feloldani 30 ml desztillált vízben, 50 ml-re feltölteni Kálium-klorid  149 g kálium-kloridot feloldani desztillált vízben, és 1000 ml-re feltölteni Fenolát oldat  2 g fenolátot feloldani desztillált vízben és 100 ml-re feltölteni Nitroprusszid-nátrium oldat  50 mg nitroprusszid-nátriumot feloldani 900 ml desztillált vízben, majd feltölteni 1000 ml-re NaOH/NaOCl oldat  5 g NaOH-t és 25 ml NaOCl feloldunk desztillált vízben, majd 1000 ml-re kiegészítjük Ammónia standard oldat I.  3,82 g NH 4 Cl-t feloldani desztillált vízben, majd 1000 ml-re kiegészíteni Ammónia standard oldat II.  Az I. jelű standardból 10 ml-t kell hígítani 1000 ml-re desztillált vízzel

Mérés menete A mérés előtti 24 órán hagyjuk a talajmintát szobahőmérsékleten Körübelül 2 g mintát mérjünk be 6 db centrifugacsőbe, lazán zárjuk le őket és helyezzük az inkubátorba 15 percre 30°C-on. 3 lombikba mérjünk be 0,5 ml-t csepegtetve az arginin oldatból és helyezzük ismét az inkubátorba 3 órára 30°C-on.

Mérés menete A másik 3 lombikhoz adjunk 0,5 ml desztillált vizet, azonnal tároljuk -20°C-on. 8 ml KCl oldatot adjunk a mintákhoz, zárjuk le a lombikokat és 30 percig rázassuk. Centrifugáljuk a mintákat 5-10 percig. Centrifugálás után a felülúszó folyadékból 0,5 ml-t kimérünk és hozzáadunk:  1,5 ml KCl-t,  1 ml-t a fenolát oldatból  0,5 ml-t nitroprusszid-nátrium oldatból és  0,5 ml-t a NaOH/NaOCl oldatból.

Mérés menete Ismét az inkubátorba helyezzük a mintákat 30 percre 30 °C-on. A minták optikai denzitását mérjük 630 nm-en KCl vak mintával szemben.

Kalibrálási sor Pipettázzunk 0; 0,5; 1; 2,5; és 4 ml-t a II. számú standard oldatból 10 ml-es mérőlombikba, majd egészítsük ki 10 ml-re KCl oldattal.

Számítás Korrekció után az értékek a következő összefüggés alapján számíthatóak: NH 4 -N (µg g -1 dwt h -1 ) = (NH 4 -N (µg ml -1 ) x 4.25) / (t x dwt)  t = inkubációs idő órában  dwt = 1 g nedves talaj száraz tömege

Felhasznált irodalom Alef K. and Nannipieri P. (Editors): Methods in Applied Soil Microbiology and Biochemistry, Academic Press Limited, London, 1995