ELISA gyakorlati menete Gyakorlat, amivel bizonyíthatjuk a HIV fertőzést anti-HIV antitestek bizonyítéka a vérben.

Slides:



Advertisements
Hasonló előadás
47. kísérlet A reakciósebesség vizsgálata
Advertisements

A DNS „ujjlenyomat” vizsgálat
OXIDOK TESZT.
10. Kísérletek acetilénnel 1. Az acetilén előállítása
„A modern természettudományos szemléltetés feltételeinek megteremtése Kisvárdán a Dr. Béres József Laboratórium korszerűsítésével, működtetésével” TÁMOP.
Gázok előállítása és reakciójuk Lugol-oldattal
Antigén-antitest kölcsönhatáson alapuló módszerek (ELISA, immunhisztokémia, Western blot, lateral flow tesztek)
3.ÓRA AZ ANYAGOK TULAJDONSÁGAI ÉS VÁLTOZÁSAI
Szükséges Eszközök: • kémcsőtartó, 3db kémcső, vegyszeres kanál, cseppentő Anyagok: • tojásfehérje, szilárd konyhasó, tömény sósav, tömény salétromsav,
14.Aceton, víz és benzin azonosítása
4. Az aceton és a formalin megkülönböztetése
Szabad aminosavak termelésének kimutatása a talajmikroorganizmusok tenyészetében.
KOMPLEMENT RENDSZER.
KÉSZÍTETTE: SZELI MÁRK
Mérések ellipszométerrel - Fehérjerétegek vizsgálata
11 Fiktív példa az ELISA, Western blot és áramlásos citometria alkalmazására a humán diagnosztikában.
GTPáz aktivitás mérése gyakorlat Lévay Magdolna
Színes világban élünk.
Készítette: Mészáros Ágnes
Készítette : Tuska Borbála 8.b április
1 Kedves Kolléga, kérlek, hogy PowerPoint előadásaidhoz ezt a file-t használd fel alapként! a bemutatóban már van néhány, általunk összeállított dia, melyeket.
Elsődleges antigén-ellenanyag kapcsolódáson alapuló immunológiai módszerek 7. hét Gyakorlat ELISA.
Szükségünk lesz valamilyen spreadsheet / táblázat kezelő programra Pl. OpenOffice, MS Excel.
Immunaffinitás kromatográfia ELISA
Az elsődleges antigén – ellenanyag kapcsolódáson alapuló
1. Kísérletek kén-hidrogénnel
15. Alumínium, magnézium és vas azonosítása
23. Szappanfőzés.
33. Tojásfehérje vizsgálata
Sósavoldat meghatározása. Szükséges Eszközök: fecskendő védőszemüveg gumikesztyű Anyagok: fenolftaleines NaOH- oldat (0,1 mol/dm 3 ) ismeretlen koncentrációjú.
32. Folyadékok elegyedése, vizsgálata jód oldódásával
5. Fenol és ecetsav megkülönböztetése NaHCO 3 -tal.
49. kísérlet Az ecetsav reakciói
34. Ecetsav és fenol reakciója nátrium-hidroxid-oldattal
37. KI és KBr azonosítása klórgázzal
Magnézium-szulfát- és alumínium-szulfát reakciói
Szilárd AgNO 3, ZnSO 4, kihevített CuSO 4 azonosítása.
Citromsav, Nátrium-acetát és szőlőcukor azonosítása
19. AgNO3-, Na2CO3- és NaOH- oldat azonosítása
Szükséges Anyagok: rézforgács, 60-65%-os salétromsavoldat,
35. Sósav és NaOH-oldat azonosítása pH-jának becslése alapján
Szükséges Eszközök: gázfejlesztő főzőpoharak fecskendők Anyagok:
Acetilén előállítása, égetése, reakciója brómos és kálium-permanganátos vízzel Acetilén előállítása, égetése, reakciója brómos és kálium-permanganátos.
Enzimvizsgálati módszerek Kitináz aktivitás mérése
Arginin ammonifikáció Készítette: Vas Nóra. Arginin ammonifikáció Ammonifikáció mérésére szolgáló labor kisérlet Ammonifikáció fontossága:  Ökoszisztémák.
Nitrifikáció vizsgálata talajban
Lipáz enzimaktivtás mérése
Talajvizsgálat kataláz aktivitás méréssel
Tömény salétromsav és kénsav azonosítása réz segítségével
Gyakorlati képzés: Genetikai variációk igazolása PCR segítségével.
DNA-Fingerprint1 Polimeráz-láncreakció termékeinek vizsgálata agaróz gélelektroforézissel.
Tagozat, 10. évfolyam, kémia, 16/1
Térkép 2..
Páciens fertőzések eredetének meghatározása. Összefüggés A fertőzött beteget a kórházban ápolták egy műtétet követően. Az ápolás során minden nap más.
Bakteriális azonosítási folyamat
Antibiogram vizsgálat baktériumtörzsön
1 Polimeráz-láncreakció termékeinek vizsgálata agaróz gélelektroforézissel.
SDS-PAGE Kísérleti protokoll Címkézzen meg 1,5 ml-es zárható tetejű mikrocsöveket a halminták neveivel. 1. Minta előkészítés.
Kölcsönhatás a molekulák között. 1.Milyen fajta molekulákat ismerünk? 2.Milyen fajta elemekből képződnek molekulák? 3.Mivel jelöljük a molekulákat? 4.Mit.
Immunoprecipitation Gyakorlati munka I. rész. Kísérleti protokoll Protokoll.
Polyacrylamid-Gél Elektroforézis (PAGE)
A GFP in vitro génexpressziója
Molekuláris biológiai módszerek
Új molekuláris biológiai módszerek
Tisztítási próba poliakrilamid gélelektroforézissel
A PLA előállítása és lebomlása
Fehérjék.
GYAKORLATI ÚTMUTATÓ A TESZTELÉS FOLYAMATA
Biohidrogén előállítása
PHB szintézise (PolyHydroxyButyrate)
Előadás másolata:

ELISA gyakorlati menete Gyakorlat, amivel bizonyíthatjuk a HIV fertőzést anti-HIV antitestek bizonyítéka a vérben

Tanári előkészületek

Mosó puffer (900 ml) 805 ml H 2 O dest ml PBS (10x) + 4,5 ml Tween 20 a mosó puffer az antitest oldat hígításához és a mikrotitráló tányér mosásához szükséges Tween 20 BSA tartalmaz, ami gátolja a szabad szilárd szakasz felszínét 1. Puffer oldatok előkészítése PBS-puffer (100 ml) 90 ml H 2 O dest ml PBS (10x) PBS-puffer szükséges a hidrofil antigének és antitestek re-hidratálásához.

2. Rehidratáció pipettázzon 0,5 ml hígított PSB-puffert az antigénbe és az első és másodrendű antitestbe! Az alapanyag oldatok ötvenszeresen koncentráltak! nyissa ki a az antitest dugaszt és az antigén edényeket! zárja le az edényeket a dugasszal és rázza őket kb. 2 percig (alapanyag oldat ) !

3. Címkézés Címke két polietilén üveggel: - antigén - elsőrendű antitest - másodrendű antitest Antigen

Diák előkészületek 8 csapat A vegyszerek 3 folyamatra elegendőek a 8 csapatnak! (3 x 160 µl stock oldat = 480 µl; 500 µl (total volume)

Kémcsövek áttekintése Kémcső színe címketartalommennyiség zöld“AG“antigén800 µl narancs“sAB“Enzimmel kötött másodrendű antitest 800 µl barna“SUB“szubsztrát800 µl lila“pAB“Elsőrendű antitest120 µl kék“WB“Mosó puffer120 µl citromsárga - Még üres!

1. Minták (P1 – P8) előkészítése -címkézze meg a 8 citromsárga kémcsőt a csoportszámokkal! -pipettázzon 60 µl elsőrendő antitest oldatot (pAB, pozitív teszteredmény) vagy 60 µl mosó puffert (WB, negatív teszteredménynél) mind a 8kémcsőbe. Írja le a szerkezetüket! (P1 – P8 a szérumminták)! -Osszon minden csapatnak 1 kémcsőt! !

Kémcsövek komplett áttekintése (teszt kezdése) Kémcső szín címketartalommennyiség Zöld“AG“antigén800 µl naranc s “sAB“secundary enzyme linked antibody 800 µl barna“SUB“subsztrát800 µl lila“pAB“elsőrendű antitest120 µl kék“WB“Elsőrendű puffer120 µl citromP1-P8“vér szérum” minta µl each

2. Végrehajtás

2.1 Antigén megkötés mikrotitráló tányéron -Címkézze meg a mikrotitráló tányért a következő kép szerint! - pipettázzon 50 µl antigén oldatot (AG, zöld kémcső) mind a 12 kutacskába! - Inkubálja 5 percig! P1 P2 P3 P4 P5 P6 P7 P8

Antitest ellenőrzés alapelv Antigének szilárd fázishoz kötődnek

2.2 Mikrotitráló tányér mosása vágja be a tányért zsebkendőn! pipettázzon 250 µl mosó puffer minden kútba! figyelem! Pipettázás közben ne fröccsenjen ki a mosó puffer más kutakba! vágjon be tányérokat új zsepin!

Antigének szilárd fázishoz kötődnek a nem formálható felszín blokkolva van Antitest ellenőrzés alapelv

pozitív kontroll: pipettázzon 50 µl elsőrendű antitestet(pAB, lila kémcső) 2 “ + ” –al jelölt kútba! 2.3 Kontroll és minta előkészületek negatív kontroll: pipettázzon 50 µl mosó puffert (WB, kék kémcső) 2 “ - ” –al jelölt kútba! pAb WB P1 P2 P3 P4 P5 P6 P7 P8

2.3 Kontroll és minta előkészületek inkubálja 5 percig! minták 1-8: pipettázzon 50 µl-t „tesztszemély szérummintájából“ P1 – P8 a 8 megfelelő kútba! Minden kúthoz használjon külön véget ! P1 P2 P3 P4 P5 P6 P7 P8

Antitest ellenőrzés alapelv antigens bind to solid phase a nem formálható felszín blokkolva van adjon hozzá szérumot, hogy tesztejük az antitestek viselkedését

2.4Mikrotitráló tányér mosása (lsd. 2.2 ) üres+ 250 µl WBüres

2.5 Másodrendű antitestek hozzáadáa inkubálja 5 percig! pipettázzon 50 µl másodrendű antitest oldatot(sAB, narancs kémcső) mind a 12 kútba!

Antitest ellenőrzés alapelv Antigének szilárd fázishoz kötődnek a nem formálható felszín blokkolva van adjon hozzá szérumot, hogy tesztejük az antitestek viselkedését enzimmel összekötött antitestek az aktuális antitestek epitópjával összekapcsolósnak

üres+ 250 µl WBüres 2.6 Kétszer mossa meg a mikrotitráló tányért (lsd. 2.2 )

2.7 Szubsztrát hozzáadása inkubálja 5 percig! pipettázzon 50 µl szubsztrát oldatot (SUB, barna kémcső) mmind a 12 kútba!

Antitest ellenőrzés alapelv Antigének szilárd fázishoz kötődnek a nem formálható felszín blokkolva van adjon hozzá szérumot, hogy tesztejük az antitestek viselkedését enzimmel összekötött antitestek az aktuális antitestek epitópjával összekapcsolósnak Fertőzés bizonyítása enzimatikus reakció által

3. Értékelés A pozitív minták kék színűek, a negatívok színtelenek maradnak(kontrol) Ellenőrizze a teszteredményeket (P1 – P8) csoportban! P1 P2 P3 P4 P5 P6 P7 P8 pl.: