FARMAKOBOTANIKA I. FÉLÉV / 1. GYAKORLAT. MIKROSZKÓPOS TECHNIKÁK, PREPARÁTUM KÉSZÍTÉS.

Slides:



Advertisements
Hasonló előadás
A növényi szövetek.
Advertisements

Az ezüst és az arany. Tk oldal
szintű vizsgálat össze- Hasonlítása - glomerulus
Készítette: Lesnik Ivett
Gyógyszerhatóanyagok oldhatósága szuperkritikus szén-dioxidban
Scanning elektonmikroszkóp Radiolaria, FM és SEM Pollen, TEM és SEM.
Szükséges Eszközök: • kémcsőtartó, 3db kémcső, vegyszeres kanál, cseppentő Anyagok: • tojásfehérje, szilárd konyhasó, tömény sósav, tömény salétromsav,
14.Aceton, víz és benzin azonosítása
A növényi sejt.
Szabad aminosavak termelésének kimutatása a talajmikroorganizmusok tenyészetében.
A Tokuyasu módszer és alkalmazása P2 receptorok vizsgálatában.
A növények teste és életműködése
Upstream / downstream folyamatok
Bioaktív komponensek kimutatása növényi mintákból
KOLLOID OLDATOK.
TRANSZMISSZIÓS ELEKTRONMIKROSZKÓP (TEM)
KÉSZÍTETTE: SZELI MÁRK
I.Osztódószövet gyökércsúcs hosszmetszet nagy sejtmag dús citoplazma
A cellulóz.
A növények ásványianyag-felvétele
Képalkotó eljárások Spektroszkópiai alkalmazások.
Képalkotó eljárások A lumineszcencia néhány alklamazásáról.
FLUORESZCENS IN SITU HIBRIDIZÁCIÓ
Forrásos hőátadás.
Képalkotó eljárások Spektroszkópiai alkalmazások.
A forrás. A forráspont Var. Bod varu.
Olvadás Topenie.
A növényi szövetek.
Optikai rács kialakítása holográfiával
Ellipszométeres mérések Fehérjék és aminosavak leválasztása és optikai modell készítése Kovács Kinga Dóra ELTE Apáczai Csere János Gyakorlógimnázium és.
Enzimaktivitási módszerek: celluláz-aktivitás mérése
Különböző spéci mikroszkópok és festési eljárások
A feloldóképesség határa És ami a határon túl van Csik Gabriella Semmelweis Egyetem, Biofizikai Intézet.
Arginin ammonifikáció Készítette: Vas Nóra. Arginin ammonifikáció Ammonifikáció mérésére szolgáló labor kisérlet Ammonifikáció fontossága:  Ökoszisztémák.
Lipáz enzimaktivtás mérése
ÖSSZEGOGLALÁS KEVERÉKEK OLDATOK ELEGYEK.
BISEL Biotikus Index a Középiskolai Oktatásban.
Háztartási vegyszerek
Anyagtudományi vizsgálati módszerek
KOLLOID OLDATOK.
Vegyipari és biomérnöki műveletek
Keverékek.
TÁMOP /1-2F Drogismereti laboratóriumi gyakorlatok – II/14. évfolyam Illóolajok minőségét jellemző fizikai és kémiai mutatószámok és.
Fizikai alapmennyiségek mérése
SEJT SZÖVET SZERV SZERVEZET= EGYED sejtfal Golgi-apparátus
A NÖVÉNYI SEJTFAL Primer sejtfal: alapállomány: pektin és hemicellulóz + cellulóz váz.
ELISA gyakorlati menete Gyakorlat, amivel bizonyíthatjuk a HIV fertőzést anti-HIV antitestek bizonyítéka a vérben.
Készítette: Sovák Miklós Konzulens: Dr. Kiss Endre
melléklet: Észterek1 diasor
keverékek szétválasztása
Molekuláris biológiai módszerek
Nanotechnológiai kísérletek
Bioinert titán-karbid/amorf szén és biopolimer-HAp-bevonat fejlesztése
Pt vékonyrétegek nanomintázása
Bioinert titán-karbid/amorf szén és biopolimer-HAp-bevonat fejlesztése
Az oldatok.
Új molekuláris biológiai módszerek
Lenin és a balzsamozás.
Spektroszkópiai alkalmazások
Szövettani technikák, általános festési és immunhisztokémiai módszerek Makromolekulák azonosítása szövettani metszeteken Zsiros Viktória
Zsiros Viktória Egészségügyi ügyvitelszervező szak 2016
Optikai mérések műszeres analitikusok számára
Növényi szövetek 1..
Különböző spéci mikroszkópok és festési eljárások
Fehérjék.
A minta-előkészítés műveletei
A növényi szövetek.
Híg oldatok tulajdonságai
Híg oldatok tulajdonságai
Előadás másolata:

FARMAKOBOTANIKA I. FÉLÉV / 1. GYAKORLAT

MIKROSZKÓPOS TECHNIKÁK, PREPARÁTUM KÉSZÍTÉS

Rögzítés nélküli minták vizsgálata Kézi metszetek frissen begyűjtött anyagból hisztokémiai vizsgálatok (keményítő, sejtfalanyagok, lipidek, alkaloidok szöveti lokalizációja) gyors, egyszerű többnyire keresztmetszet, viszonylag vastag A bőrszövet vizsgálata: epidermisz nyúzat tisztítás (hypo) festés

Levélderítés  színanyagok és néhány szövet kioldása  felszíni struktúrák (trichómák), sejtfalak, szállítószövet rendszer, kristályok megmaradnak vizsgálhatók Forralás: desztillált víz 10% alkohol : tömény KOH (7:3) 5% H 2 O 2 átöblítés desztillált vízzel 96% alkohol (festés)

A növényi rész feldarabolása

forralás desztillált vízben

10 % alkohol és cc. KOH oldata

forralás alkohol : KOH oldatában

kezelés 5 % H 2 O 2 -dal

átöblítés desztillált vízzel

kezelés 96 % etanollal

kész derített levéldarab

derített levél fénymikroszkópos képe

RÖGZÍTÉS (FIXÁLÁS) az életfolyamatok megszűnnek többé-kevésbé az élő állapotnak megfelelő rögzítés (tökéletes nincs) Rögzítő anyagok: sok és stabil keresztkötés kialakítása polipeptid láncok között jól penetrálnak : behatolnak a növényi szövetekbe

Rögzítő anyagok etil-alkohol:  kézi metszetek fénymikroszkópos vizsgálatra  konzervál is  keményít  jól metszhetővé tesz  víztelenít, zsugorít ozmium-tetroxid (OsO 4 ):  egyik legjobb rögzítőszer – főleg TEM  mérgező!  sejtmag és citoplazma szerkezetét jól megtartja  lassan hatol be a szövetekbe – kis szövetdarabok rögzítése

Rögzítő anyagok rögzítő keverékek: alkoholos formalin TEM – kettős fixálás: Prefixálás:- fehérjék gyors stabilizálása - monoaldehid (pl. paraformaldehid) vagy dialdehid (pl. glutáraldehid) segítségével; pufferrel oldat készítése, pH beállítása Mosás – pufferrel Posztfixálás:ozmium-tetroxiddal KONZERVÁLÁS - pl. Strassburger-Flemming féle tartósító: 100% alkohol : glicerin : deszt. víz 1:1:1 arányú elegye - így hosszú ideig eltarthatók a minták

növényi minták fixálóban

VÍZTELENÍTÉS átitató (beágyazó) anyagok: hidrofóbak elektronmikroszkóp – vákuum – csak vízmentes minták ! (ne legyen fényvisszaverés pl.) vízelvonószer sorozat: etil-alkohol: 30, 50, 70, 90, 96 és 100% (felszálló sorozat) aceton 70, 90, 100% xylol I., II. TARTÓS PREPARÁTUMOK KÉSZÍTÉSE

fixált minta

aceton 70 % aceton 90 % aceton 100 % xilol I. xilol II.

minták víztelenítése gézben

xilol I – II.

VÍZTELENÍTÉS SEM: kritikus ponton szárítás 1. nyomás- és hőmérséklet kombináció  2. mintában folyadék és felette gőz fázis sűrűsége nem különböztethető meg  3. a folyadék gőzként vonható el BEÁGYAZÁS - klasszikus: paraffin vagy paraplaszt (hidrofób) - előtte: intermedier anyag: benzol vagy xilol - beágyazás műgyantába: poliészter- és epoxigyanták (pl. Araldit, Durcupan, Technovit)

szilárd paraplaszt a termosztátban

felolvadt paraplaszt a mintákkal

paraplaszt mintatartókba

minta behelyezése a felolvadt paraplasztba

megszilárdult paraplaszt (=blokk) kiemelése a mintatartóból

blokk faragása (= trimmelés)

kész blokk

műgyantás mintatartó 10 db mintának

kész műgyantás blokk mintával

MIKROTOMOS METSZÉS Fénymikroszkópos vizsgálat: paraffin beágyazás szánka- / rotációs mikrotom: acél kés 1-2  20  m vastag műgyantás beágyazás  félvékony metszetek Transzmissziós elektronmikroszkópia: műgyantás beágyazás ultramikrotom: üveg vagy gyémánt kés, a minta mozog (az üveg olcsó, de rövidebb életidejű) nm vastag

szánkamikrotóm

mintatartó „satu”

rotációs mikrotóm

minta blokkban

A METSZETEK RÖGZÍTÉSE pl. zselatinnal vonjuk be a tárgylemezt (vagy glicerin – tojásfehérje keveréke) félvékony metszetek – melegítés – tárgylemezre tapadnak ˚C-on TEM metszetek: gridre (fémrács) FESTÉS Fénymikroszkópos festékek:  savanyú anilinfesték-oldatok: anilinkék, eozin, szudán III. és IV.  bázikus anilinfesték-oldatok: malachitzöld, szafranin, toluidinkék (= leggyakoribb)

FESTÉS Hisztokémiai festékek: - frissen gyűjtött, élő anyagból készített metszeteken sósavas floroglucin:lignin kimutatása ruténiumvörös:pektintartalmú sejtfalak szudán III.:lipidek, (illó)olajok, viasz, kutin, szuberin vas(III) - klorid:csersavak, flavonoidok Dragendorff - reagens:alkaloidok (vörös) kálium - jodidos jód:amiloplasztok (kék), aleuron (barna) (Lugol-oldat) METSZETEK ÁLLANDÓSÍTÁSA glicerin-zselatin kanadabalzsam ( kanadai balzsamfenyő)

kész preparátumok festőkádak

Kész festett preparátum (levél keresztmetszet)

Kész preparátumok kiértékelése (p. morfológiai mérések) számítógépes programokkal