Talajmikroorganizmusok vizsgálata: széntranszformációs teszt OECD 217

Slides:



Advertisements
Hasonló előadás
Nitrogén vizes környezetben
Advertisements

E85 Szűcs Dániel 11.A.
Készítette: Gyűrűsi Attila. Az OECD 428-as irányelv alapján információt nyerhetünk a vizsgálandó anyagok felszívódására kimetszett bőrmintán.
Kommunális szennyvíziszapból tápanyag gazdálkodásra alkalmas termék
A FŰSZERPAPRIKA TERMÉSE ELTÉRŐ TÁPANYAG-ELLÁTOTTSÁG ESETÉN
Készítette: Hokné Zahorecz Dóra 2006.december 3.
Kiskunhalas környékének talajai
KOMPLEX CUKORRENDSZEREK
1872 : 1. nemzeti park megalakítása Yellowstone
Gyógyszeripari vízkezelő rendszerek
A takarmányok összetétele
Felszíni víz monitoring
Felszíni és felszín alatti víz monitoring
Vízminőségi jellemzők
Szabad aminosavak termelésének kimutatása a talajmikroorganizmusok tenyészetében.
A talaj összes nitrogén tartalmának meghatározása
A talaj mikrobiális biomassza meghatározása fumigációs módszerekkel.
Biológiai talajvizsgálati módszerek
TALAJVÉDELEM XI. A szennyezőanyagok terjedését, talaj/talajvízbeli viselkedését befolyásoló paraméterek.
Előfizetői vezetékszakadás
Dr. Szalka Éva, Ph.D.1 Statisztika II. VII.. Dr. Szalka Éva, Ph.D.2 Mintavétel Mintavétel célja: következtetést levonni a –sokaságra vonatkozóan Mintavétel.
Ragasztás és felületkezelés
Előadó: Prof. Dr. Besenyei Lajos
KÖRNYEZETVÉDELEM VÍZVÉDELEM.
Bányácski Sándor mezőgazdasági mérnök szak IV. évfolyam
HS-GC-MS Hámornik Gábor Koványi Bence Simó Zsófia Szabó Eszter
Egy folyékony mintában valamilyen baktérium koncentrációját szélesztést követően agarlemezes telepszámlálással határozzuk meg. Tízes alapú hígítási sort.
Egytényezős variancia-analízis
Az esszenciális mikroelemek jelentősége
Az angolperje cink- és kadmiumfelvételének vizsgálata kistenyészedényes kísérletben Szabó Szilárd – Hangyel László – Ágoston Csaba Debreceni Egyetem Tájvédelmi.
Az anaerob rothasztók ellenőrzése és biokémiai jellemzése
Biogáz Tervezet Herkulesfalva március 01..
Környezeti monitoring Feladat: Vízminőségi adatsor elemzése, terhelés (anyagáram) számítása Beadás: szorgalmi időszak vége (dec. 11.), KD: dec. 21.
ADSZORPCIÓ.
TALAJ KÉMIAI TULAJDONSÁGAI
TÁMOP /1-2F Analitika gyakorlat 12. évfolyam Környezeti analitikai vizsgálatok Fogarasi József 2009.
Felszíni víz monitoring
Talajképződés Gruiz Katalin.
Vegyi anyagok hatása talaj szénanyagcseréjére Forrás: OECD 217 Varga Judit.
Szárazföldi növény teszt: csírázás és csíra növekedés teszt
Szerves talajszennyező anyagok fázisok közötti megoszlása és biológiai hozzáférhetősége Budapesti Műszaki és Gazdaságtudományi Egyetem Mezőgazdasági Kémiai.
Talajsterilezés Herman Edit. Sterilitás definíciója Külső behatás következtében kialakuló olyan állapot, amiben a vizsgált terület teljesen mikroba-mentes.
Ásványokhoz és kőzetekhez köthető környezeti károk.
Arginin ammonifikáció Készítette: Vas Nóra. Arginin ammonifikáció Ammonifikáció mérésére szolgáló labor kisérlet Ammonifikáció fontossága:  Ökoszisztémák.
Nitrifikáció vizsgálata talajban
Lipáz enzimaktivtás mérése
Collembola szaporodásának vizsgálata vegyi anyaggal szennyezett talajokon.
FDA hidrolízis aktivitási teszt
Mintavétel talajból, talajminták tárolása
Készítette: Simon Andrea.  Anderson & Domsch, 1978  A mikrobiális biomassza mérésére használatos közelít ő módszerek egyike.  Alkalmazható savanyú.
Talaj Nitrogén-Transzformációs teszt OECD 216 szabvány alapján
Készítette: Cserdi Péter Környezetmérnök szakos hallgató Szerves foszfor extrakciója talajból.
Nitrogén mineralizáció
ATP (Adenozin-trifoszfát) meghatározása talajban - kénsavas, foszfátos extrakciós eljárással Tóth Anna Szilvia.
OECD GUIDELINE FOR THE TESTING OF CHEMICALS Soil Microorganisms: Carbon Transformation Test OECD ÚTMUTATÓ VEGYI ANYAGOK TESZTELÉSÉRE Talaj Mikroorganizmusok:
Hipotézis vizsgálat (2)
Alapsokaság (populáció)
Vízszennyezés.
II. RÉSZ OLAJSZENNYEZÉSEK.
I. előadás.
Őszi búza vetőmagok összehasonlító elemzésének leírása Kanyó András.
Állandóság és változás környezetünkben
Levegőtisztaság- védelem 11. Hulladéklerakók okozta légszennyezés.
Mintavétel.
Szervetlen vegyületek
Szabályozott és képes termékek/szolgáltatások, folyamatok, rendszerek
1. ábra A 3A9EC szerkezeti képlete
Mintavétel talajból, talajminták tárolása
Méréstechnika 1/15. ML osztály részére 2017.
1.3. Hipotézisvizsgálat, statisztikai próbák
Előadás másolata:

Talajmikroorganizmusok vizsgálata: széntranszformációs teszt OECD 217 Varga Judit

Tartalom Bevezetés Elv Módszer Teszt talaj kiválasztása A talajminták gyűjtése és tárolása A vegyi anyag talajra vitele Teszt koncentrációk Vizsgálati körülmények Az eredmények elemzése

Bevezetés Hosszú távú hatást vizsgál Növényvédőszer vagy más vegyi anyag egyszeri hatása a talajmikroorganizmusok széntranszformációs képességére A teszt alapja: European and Mediterranean Plant Protection Organisation German Biologische Bundesanstalt, US Environmental Protection Agency, SETAC OECD Workshop on Soil/Sediment Selection, Belgirate, Italy, 1995: a tesztelésre használható talajok típusának meghatározása

Széntranszformáció: szerves anyag mikroorganizmusok általi lebontása, melynek során szervetlen végtermék, szén- dioxid keletkezik.

A teszt összefoglalva A vizsgált vegyi anyagok toxikus jellemzőinek értékelésekor: a talaj mikrobiális aktivitására való hatást kell vizsgálni Mezőgazdaságban használt vegyi anyagok (növényvédőszer, műtrágya): széntranszformáció és nitrogén transzformáció vizsgálata is szükséges Mert: nitrogéntranszformáció vizsgálata során bizonyos vegyi anyagok EC50 értéke megegyezik a kereskedelemben kapható nitrifikációs inhibítorokéval (pl.: nitrapyrin), tehát széntranszformációs teszt elvégzése szükséges további információkhoz Más esetben: nitrogéntranszformáció vizsgálata elegendő Aerob felszíni talaj a teszteléshez A teszt érzékeny a mikrobák méret és aktivitás változására, mert a teszt a mikrobákra irányul Homokos, kevés szerves anyagot tartalmazó talaj használandó A talajt kezeljük a vegyi anyaggal, majd inkubáljuk olyan körülmények között, melyek a gyors mikrobiális lebontást lehetővé teszik Ezáltal a talajban lévő könnyen lebontható szénforrások gyorsan lebomlanak Ez szén hiányt okoz, mely megöli a mikrobiális sejteket Ha a teszt 28 napnál tovább tart, ezen reakciók eredménye mérhető a kontroll talajhoz képest, mintegy csökkenése a metabolikusan aktív mikrobiális biomasszának A mezőgazdaságban használt vegyi anyagok tesztelhetők mint aktív összetevők és mint formulázott termékek is

A teszt elve Szitált talaj, a tesztelendő vegyi anyaggal kezelve és kontrollként Mezőgazdaságban használt vegyi anyagok: min. 2 teszt cc. a természetben várható legmagasabb cc. ismeretében megválasztva 0, 7, 14, 28 nap inkubálás után a talajokat glülózzal keverik össze, és a glükóz okozta légzési sebességet mérik 12 egymást követő órában Kilélegzett CO2 (mg CO2/kg száraz talaj/h), vagy elfogyasztott O2 (mg O2/kg talaj/h) A szennyezett és kontroll talaj légzését összehasonlítják és a szennyezettnek a kontrolltól való %-os eltérését kifejezik Mindegyik teszt min. 28 napig megy Ha a 28. napon a szennyezett és kontroll talaj közötti különbség 25 % vagy annál nagyobb, akkor még további 14 napos időszakokra folytatni kell a tesztet, max. 100 napig Ha nem mezőgazdaságban használt vegyi anyagok : a szennyező anyagból hígítási sort készítünk, melyet a talajmintához adunk és a glükóz indukált légzést mérjük 28 nap múlva A hígítási sorral készített teszteket regressziós modellel elemezzük, és ECX értéket számolunk (EC50, EC25, EC10) A teszt érvényessége a különbség a párhuzamos minták között ±15%-nál kevesebb kell hogy legyen

A módszer ismertetése Eszközök A teszt edények kémiailag inert anyagúak legyenek Vízveszteséget minimalizálni kell A gázcserét lehetővé kell tenni a teszt során (pl.: a teszt edények bevonata perforált polietilén fólia legyen) Illékony anyagok vizsgálatánál zárható és gáztömör edényeket kell felhasználni, ezek olyan méretűek kell hogy legyenek hogy kb. ¼ részükben legyen minta A glülóz-indukált légzés vizsgálatakor szükséges: inkubálás és a CO2 termelés vagy O2 fogyasztás mérésére alkalmas berendezés

A teszttalaj kiválasztása Tulajdonságai: homok tart.: 50–75% között pH: 5,5 – 7,5 szerves C tart.: 0,5 – 1,5% A mikrobiális biomassza tömegét meg kell mérni, és annak C tartalma a teljes szerves C tart. legalább 1%-a kell hogy legyen A teszt talaj ezekkel a tulajdonságokkal a legrosszabb esetet képviseli

A talajminták gyűjtése és tárolása 1. Részletes információk szükségesek arról a területről ahonnan a talajminta származik (pontos hely, növénytakaró, a növényvédőszerrel való kezelés ideje, szerves és szervetlen trágyázás, biológiai anyagok hozzáadása vagy véletlen szennyeződések) Állandó legelők, mezők gabonanövényekkel A kiválasztott területet a mintavétel előtt min 1 évig nem szabad hogy növényvédőszerrel kezeljék A mintavétel kerülendő hosszantartó szárazság (több mint 30 nap) alatt vagy azt követően Szántóföldi talajok esetében a mintát a felszínről vagy az alatta lévő 20 cm-es rétegből kell venni Legelők esetén a mintavételezési mélység kicsit lehet több 20 cm-nél, pl.: 25 cm A talajmintákat zárt edényekben, megfelelő hőmérsékleten tartva kell tárolni, hogy a talaj tulajdonságai ne változzanak meg

A talajminták gyűjtése és tárolása 2. Frissen gyűjtött talaj használata a legjobb Tárolás: sötét, 4±2°C, max. 3 hónap, aerob körülmények A talaj kezelése és előkészítése Előinkubálás: ha tároljuk a talajt: 2-28 nap, a hőm. és a nedv. tart. ugyanolyan legyen mint amit a teszt igényel Fizikai- kémiai jellemzők A talajt kézzel megtisztítják a nagy tárgyaktól kövektől, növényi részektől, utána nedvesen szitálják, 2mm vagy annál kisebbre A nedvességtart. desztillált v. ioncserélt vízzel állítható be a kívánt 40-60%-ra

A vegyi anyag talajra vitele A vizsgálandó vegyi anyagot közeg segítségével visszük a talajra (víz, ha vízoldható) vagy inert szilárd anyag (pl.: finom kvarc; 0,1–0,5 mm) Szerves oldószer nem használható, mert a talajmikroflórát rombolja A kontroll mintákat csak az azonos mennyiségű vízzel vagy kvarccal keverik össze Illékony vegyi anyagok esetében a vizsgálat alatti veszteség kiküszöbölése és a talajban való homogén eloszlás biztosítása szükséges

Tesztelendő koncentrációk Az olyan vegyi anyag esetén, aminek van becsülhető környezetbeli koncentrációja: legalább két koncentrációt kell vizsgálni: egyrészt egy kisebbet, ami egyenlő azzal a koncentrációval, ami minimálisan eléri a talajt Mezőgazdaságban használt vegyi anyagok esetén a PEC (Predictable Environmental Concentration) határozza meg a vizsgálandó koncentrációt Olyan szereknél melyeket egy szezonban többször is használnak, a várható alkalmazások számával kell megszorozni a PEC-t, amikor a tesztben alkalmazott koncentrációt tervezzük Vegyi anyag: legalább 5 tagból álló geometriai sorozat adja a tesztelendő koncentrációértékeket

A vizsgálat Mezőgazdaságban használt vegyi anyagok:3 egyenlő részre a talaj: 2 rész összekeverve a hordozóanyagra vitt vegyi anyaggal+ 1rész csak a közeggel keverve (kontroll) Min. 3 párhuzamos minta Vegyi anyagok: 6 egyenlő részre osztani A tesztelendő vegyi anyagot homogénen kell eloszlatni a talajmintákban Teszt körülmények Sötét szobában, 20 ±2°C A talaj víztartó képesség 40–60%- ának (+-5%)megfelelő nedvességen kell tartani a mintákat, desztillált vagy ioncserélt víz adható ha szükséges Min. 28 nap Vegyi anyag: a teszt befejeződik 28 nap után: kilélegzett CO2 vagy elfogyasztott O2 mennyiségének meghatározása, ebből: EC

A glükóz okozta légzési sebesség mérése: aktivitás ellenőrzése Szennyezett és kontroll talajra is el kell végezni A talajmintákat össze kell keverni megfelelő mennyiségű glükózzal annak érdekében, hogy kiváltsunk egy azonnal jelentkező légzési maximumot Homokos talajokra, ahol a szerves C tart. 0,5- 1,5%, 2000–4000 mg glükóz/kg száraz talaj általában elegendő

Az eredmények elemzése Mezőgazdaságban használt vegyi anyagok: CO2 kilégzés vagy O2 fogyás feljegyzendő, és ezen értékek táblázatba foglalandók Kiértékelés statisztikai módszerekkel (pl.: F-próba 5%-os szignifikancia szinten) mg CO2/kg száraz talaj/h vagy mg O2/száraz talaj/h Az átlagos CO2 képződési ráta összehasonlítva a kontrollal, eredmény a kontrolltól való %-os eltérés Vegyi anyagok: A CO2 fogyást vagy O2 termelést minden egyes esetben meghatározzák, dózis-válasz görbét készítenek, melyből az ECx érték meghatározható A glükóz által indukált légzési ráta (CO2 és O2), 28 nap után összevetendő a kontroll talajéval, ezekből az értékekből minden egyes tesztelési cc.-ra gátlási % határozható meg. Ezeket a koncentráció függvényében ábrázolva, statisztikai módszereket használva számítható az ECx érték. 95%-os konfidencia szint mellett

Köszönöm a figyelmet!