A GFP in vitro génexpressziója

Slides:



Advertisements
Hasonló előadás
A Szállítási feladat megoldása
Advertisements

A DNS „ujjlenyomat” vizsgálat
OXIDOK TESZT.
Színformátumok és színmodellek
10. Kísérletek acetilénnel 1. Az acetilén előállítása
„A modern természettudományos szemléltetés feltételeinek megteremtése Kisvárdán a Dr. Béres József Laboratórium korszerűsítésével, működtetésével” TÁMOP.
Szükséges Eszközök: • kémcsőtartó, 3db kémcső, vegyszeres kanál, cseppentő Anyagok: • tojásfehérje, szilárd konyhasó, tömény sósav, tömény salétromsav,
14.Aceton, víz és benzin azonosítása
A színek számítógépes ábrázolásának elve
MON-TEK GENERÁTOR használati útmutató A Mon-Tek Generátor átvétele 1. A Mon-Tek Mo99/Tc99 Generátor szállítása Type A konténerben történik, magassága 41.
Mikronalalitikai kurzus elválasztástechnika
Webdesign I - Oldaltervezés alapelvek. I. Tartalom-elhelyezés az oldalon ALAPELVEK 1.Mindig értékes és érdekes tartalom jelenjen meg az oldalon! 2.A tartalom.
GTPáz aktivitás mérése gyakorlat Lévay Magdolna
Gélelektroforézis Molina Csaba.
Készítette : Tuska Borbála 8.b április
STRONCIUM-ION MEGKÖTŐDÉSÉNEK KINETIKÁJA TERMÉSZETES AGYAGMINTÁKON
A gélelektroforézis Alkalmazása: különböző molekulák (nukleinsavak, fehérjék) -méret szerinti elválasztását, -detektálását -mennyiségének meghatározását.
Szükségünk lesz valamilyen spreadsheet / táblázat kezelő programra
Vénás vérvétel.
1. Kísérletek kén-hidrogénnel
Sósavoldat meghatározása. Szükséges Eszközök: fecskendő védőszemüveg gumikesztyű Anyagok: fenolftaleines NaOH- oldat (0,1 mol/dm 3 ) ismeretlen koncentrációjú.
32. Folyadékok elegyedése, vizsgálata jód oldódásával
Vízkeménység vizsgálata szappanforgáccsal
49. kísérlet Az ecetsav reakciói
30. Brómos víz vizsgálata benzin és hangyasavoldat segítségével
34. Ecetsav és fenol reakciója nátrium-hidroxid-oldattal
37. KI és KBr azonosítása klórgázzal
Magnézium-szulfát- és alumínium-szulfát reakciói
Szilárd AgNO 3, ZnSO 4, kihevített CuSO 4 azonosítása.
25. Nátrium-karbonát, kálium-bromid és kalcium-karbonát azonosítása
Citromsav, Nátrium-acetát és szőlőcukor azonosítása
48. kísérlet Sók azonosítása vizes oldatuk kémhatása alapján
35. Sósav és NaOH-oldat azonosítása pH-jának becslése alapján
Acetilén előállítása, égetése, reakciója brómos és kálium-permanganátos vízzel Acetilén előállítása, égetése, reakciója brómos és kálium-permanganátos.
Enzimvizsgálati módszerek Kitináz aktivitás mérése
Arginin ammonifikáció Készítette: Vas Nóra. Arginin ammonifikáció Ammonifikáció mérésére szolgáló labor kisérlet Ammonifikáció fontossága:  Ökoszisztémák.
Nitrifikáció vizsgálata talajban
Lipáz enzimaktivtás mérése
Talajvizsgálat kataláz aktivitás méréssel
ATP (Adenozin-trifoszfát) meghatározása talajban - kénsavas, foszfátos extrakciós eljárással Tóth Anna Szilvia.
OECD GUIDELINE FOR THE TESTING OF CHEMICALS Soil Microorganisms: Carbon Transformation Test OECD ÚTMUTATÓ VEGYI ANYAGOK TESZTELÉSÉRE Talaj Mikroorganizmusok:
Monitorok.
Fogszín meghatározás 2008.
Színkezelés RGB-színrendszer Készítette : Zelnik Paloma
Színkezelés RGB-színrendszer Zarka Eszter márc. 27.
Színkezelés RGB-színrendszer Készítette: Soós Lilla 2012 március 27.
Gyakorlati képzés: Genetikai variációk igazolása PCR segítségével.
DNA-Fingerprint1 Polimeráz-láncreakció termékeinek vizsgálata agaróz gélelektroforézissel.
PowerPoint 7. Évfolyam Formázások. Mentés A feladatot mentsük el a saját mappánkba „7_2_ppt_SajátNév” néven (ahol a SajátNév a saját nevünk helyesen leírva,
Bináris szám-, karakter- és képábrázolás
Tagozat, 10. évfolyam, kémia, 16/1
Páciens fertőzések eredetének meghatározása. Összefüggés A fertőzött beteget a kórházban ápolták egy műtétet követően. Az ápolás során minden nap más.
Bakteriális azonosítási folyamat
Antibiogram vizsgálat baktériumtörzsön
1 Polimeráz-láncreakció termékeinek vizsgálata agaróz gélelektroforézissel.
Fehérjeszekvenálás Mikronalalitikai kurzus fehérjeszekvenálás.
SDS-PAGE Kísérleti protokoll Címkézzen meg 1,5 ml-es zárható tetejű mikrocsöveket a halminták neveivel. 1. Minta előkészítés.
Immunoprecipitation Gyakorlati munka I. rész. Kísérleti protokoll Protokoll.
ELISA gyakorlati menete Gyakorlat, amivel bizonyíthatjuk a HIV fertőzést anti-HIV antitestek bizonyítéka a vérben.
Molekuláris biológiai módszerek
Polyacrylamid-Gél Elektroforézis (PAGE)
Molekuláris biológiai módszerek
Proteomika, avagy a fehérjék „játéka”
Új molekuláris biológiai módszerek
Tisztítási próba poliakrilamid gélelektroforézissel
Tejsav előállítása Lactobazillus Delbrueckii által
A PLA előállítása és lebomlása
GYAKORLATI ÚTMUTATÓ A TESZTELÉS FOLYAMATA
Biohidrogén előállítása
PHB szintézise (PolyHydroxyButyrate)
Előadás másolata:

A GFP in vitro génexpressziója Kísérleti lépések A GFP in vitro génexpressziója és Fehérje analízis SDS-PAGE által 09.05.2018

A kísérlet célja A zölden fluoreszkáló fehérje kifejezésre kerül egy E. coli sejtmentes rendszerben. 2. A kifejeződő GFP-t SDS-PAGE fogja kimutatni, majd molekuláris tömege is meghatározásra kerül. 09.05.2018

A kísérlet időtartama 60 perc: A minta előkészítése, és az in vitro génexpresszió összeállítása 120 perc: GFP kifejeződés 70 perc: Az SDS-PAGE végrehajtása 30 perc: A gél kiértékelése és a GFP molekuláris tömegének meghatározása 09.05.2018

A kísérlet előkészítése Melegítse fel a vizes fürdőt 30°C-ra. 30°C 09.05.2018

A kísérlet előkészítése 3. DNase- / RNase-mentes víz előkészítése Készítsen elő csavaros kémcsőben 400 µl steril H2O-t, majd melegítse mikrohullámú sütőben 600 Watton 7 percig. 09.05.2018

A kísérlet előkészítése Az elektroforézis puffer előkészítése Hígítsa fel a koncentrált Tris/Glycin/SDS- buffert (TGS) 1:10 arányban desztillált H2O-val. Számoljon minden kamrára végső térfogatként 350 ml-t: 35 ml koncentrált TGS puffer + 315 ml H2Odeszt. (2 kamrára – egyenként 2-2 géllel – lesz szükség) 09.05.2018

A kísérlet előkészítése 5. Csoportmunka: 8 csoport számára 8 törzsoldat előkészítése.   09.05.2018

A kísérlet előkészítése 1. csoport: Az E.coli lizátum kiadagolása Címkézze fel a 8 piros kémcsövet a saját csoportszámával. Mérjen ki 12 µl-t az 1-es számú piros kémcső törzsoldatából (teljes térfogat: 120 µl) mind a nyolc felcímkézett kémcsőbe. Adjon minden csoportnak egy kémcsövet.   09.05.2018

A kísérlet előkészítése 2. csoport: A reakciókeverék kiadagolása Címkézze fel a nyolc zöld kémcsövet saját csoportszámával. Mérjen ki 12 µl-t a 2-es számú zöld kémcső törzsoldatából (teljes térfogat: 110 µl) mind a nyolc felcímkézett kémcsőbe. Adjon minden csoportnak egy kémcsövet.   09.05.2018

A kísérlet előkészítése 3. csoport: Az aminosavas oldat kiadagolása 1.   Címkézze fel a nyolc kék kémcsövet a saját csoportszámával. Mérjen ki 14 µl-t a 3-as számú kék kémcső törzsoldatából (teljes térfogat: 130 µl) mindegyik felcímkézett kémcsőbe. 3. Adjon minden csoportnak egy kémcsövet.   09.05.2018

A kísérlet előkészítése 4. csoport: A metionin oldat kiadagolása     1. Címkézze fel a nyolc sárga kémcsövet a saját csoportszámával. Mérjen ki 10 µl-t a 4-es számú sárga kémcső törzsoldatából (teljes térfogat: 105 µl) mind a 8 felcímkézett kémcsőbe. Adjon minden csoportnak egy kémcsövet.   09.05.2018

A kísérlet előkészítése 5. csoport: A rekonstitúciós puffer kiadagolása 1.   Címkézze fel a nyolc rózsaszín kémcsövet a saját csoportszámával. Mérjen ki 7 µl-t az 5-ös számú kémcső pufferjéből (teljes térfogat: 70 µl) mind a 8 felcímkézett kémcsőbe. Adjon minden csoportnak egy kémcsövet.   09.05.2018

A kísérlet előkészítése 6. csoport: A GFP vektor kiadagolása 1.  Címkézze fel a nyolc színtelen kémcsövet a saját csoportszámával. Mérjen ki 10 µl DNáz-mentes vizet mind a 8 felcímkézett kémcsőbe. Mérjen ki 1 µl GFP vektort a 6-os számú kémcsőből (teljes térfogat: 16 µl) mindegyik felcímkézett kémcsőbe, és rázogatással keverje el. Adjon minden csoportnak egy kémcsövet.   09.05.2018

A kísérlet előkészítése 7. csoport: A Kaleidoszkóp standard kiadagolása 1.  Címkézzen fel 8 kémcsövet a saját csoportszámával. Mérjen ki 12 µl Kaleidoszkóp standard-ot a 7-es számú kémcsőből (teljes térfogat: 110 µl) mindegyik felcímkézett kémcsőbe. Adjon minden csoportnak egy kémcsövet.    09.05.2018

A kísérlet előkészítése 8. csoport: A „Lämmli puffer” kiadagolása 1.  Címkézzen fel 8 kémcsövet a saját csoportszámával. Mérjen ki 22 µl „Lämmli puffert” a 8-as számú kémcsőből (teljes térfogat: 200 µl) mind a 8 felcímkézett kémcsőbe. Adjon minden csoportnak egy kémcsövet.   09.05.2018

Az adagok szétosztása Az következő kémcsövek minden csoport tartójában ott kell hogy legyenek. 09.05.2018

Az in vitro expresszió összeállítása 09.05.2018

1. Az in vitro expresszió összeállítása 1.1 Mérjen ki a vörös kémcsőbe 1, amely már tartalmaz 12 µl E.coli lizátumot 1. 10 µl reakciókeveréket (zöld kémcső 2) 2. 12 µl aminosavat (kék kémcső 3) 3. 1 µl metionint (sárga kémcső 4) 4. 5 µl puffert (rózsaszín kémcső 5) 5. 10 µl GFP vektort (színtelen kémcső 6) 09.05.2018

1. Az in vitro expresszió összeállítása Feladat: ellenőrizze UV fény alatt a vörös csőben a fluoreszkáló anyag jelenlétét. 09.05.2018

1. Az in vitro expresszió összeállítása 1.2 Inkubálja a reakciókeveréket 120 percig 30°C-on a vízfürdőben. 30°C 09.05.2018

Az in vitro expresszió kiértékelése   120 perc inkubálást követően UV fény alatt vizsgálja meg, látható-e a GFP kifejeződés.     09.05.2018

Az SDS-PAGE végrehajtása 09.05.2018

2. A gél lapka előkészítése 2.1 Vágja fel az előreöntött gél csomagolását a vonal mentén és vegye ki a gél kazettát. 09.05.2018

2. A gél lapka előkészítése 2.2 Vágja fel borotvapengével vagy szikével a gél kazetta szalagját a megjelölt vonal mentén, és távolítsa el alsó szalagot. 09.05.2018

3. Az elektroforézis kamra előkészítése 3.1 Rakja a gél kazettát a rövidebb végével befelé fordítva az elektród-kamrába. Rakjon egy másik gél kazettát vagy egy vak kazettát a kamra másik oldalára is. 3.2 Helyezze el az elektród állványt a szorító keret közé és zárja be a pántokat. 3.3 Rakja be a szorító keretet benne az elektród-kamrával a puffer tartályba. 3.4 Húzza ki a fésűt. 09.05.2018

4. A kamra megtöltése 4.1 Töltse meg az elektród állványt 140 ml TGS pufferrel. 4.2 Töltse meg a puffer tartályt 200 ml TGS pufferrel. 09.05.2018

Az elektroforézis kamra előkészítése Útmutató: Ha a puffer kifut a szorító keretből akkor vegye ki a puffert, és rögzítse újra. Ha a puffer ismét kifut, töltse ugyanazt a mennyiséget a puffer tartályba, mint amit az elektród állványba. 09.05.2018

5. Az SDS-PAGE előkészítése 5.1 Címkézzen meg egy új, színtelen kémcsövet a saját csoportja számával. 5.2 Két órával a génexpresszió után helyezzen át 20µl-t a vörös kémcsőből a címkézettbe. 5.3 Mérjen ki 20µl Lämmli puffert (8-as kémcső) a megcímkézett kémcsőbe és rázogatással keverje el. 09.05.2018

6. A nyílások megtöltése Két csapat osztozik egy gélen A jobb és a bal nyílás üresen marad 09.05.2018

6. A nyílások megtöltése 6.1 Töltse meg a nyílásokat a következőkkel: - 10 µl Kaleidoszkóp fehérje standard (KP, 7-es kémcső) - 10 µl az 1. csoport mintájából (P1) - 10 µl a 2. csoport mintájából (P2) - 10 µl Kaleidoszkóp fehérje standard (KP,7-es cső) -- KL - P1 - - P2 - KL -- 09.05.2018

7. Az elektroforézis végrehajtása 7.1 Zárja be a gél kamrákat és kezdje meg a gélelektroforézist 200V-on 7.2 Állítsa le a folyamatot, amikor a Bróm-fenol kék eléri a gél alacsonyabb végét. ( ez kb. 25 percet vesz igénybe.) 09.05.2018

8. A gél eltávolítása 8.1 Távolítsa el a szorító keretet és öntse bele a puffert a konténerbe. A puffer újrahasznosítható! 8.2 Fektesse le a gél kazettát a rövidebb felével fölfelé. 09.05.2018

9. A gél vizsgálata 9.1   UV fény alatt vizsgálja meg, hogy megjelenik-e a zölden fluoreszkáló fehérje.     9.2 A kalibrációs görbe alapján határozza meg a molekuláris tömeget. 09.05.2018

Sojabean Trypsin Inhibitor 9. A gél vizsgálata Protein color MW Myosin blue 201090 Da ß-Galactosidase magenta 133730 Da Bovine albumin green 83559 Da Carbonanhydrase violett 39559 Da Sojabean Trypsin Inhibitor orange 31405 Da Lysozyme red 17408 Da Aprotinine 7081 Da Táblázat: A fehérjék molekuláris tömege a Kaleidoszkóp standard-ban 09.05.2018

Az elektro-forézis eredménye -- KL - P1 - - P2 - KL -- Az elektro-forézis eredménye - kD 200 134 ? ? ? 84 40 31 17 7 + KL = Kaleidoszkóp fehérje standard; P1 = 1. minta; P2 = 2. minta 09.05.2018

Az elektroforézis matematikai analízise Vázoljon fel egy kalibrációs görbét a fehérje standard segítségével: Mérje meg a távolságot a nyílástól a fehérjevonalig. 09.05.2018

A GFP molekuláris tömege: 27 000 Da Eredmény A GFP molekuláris tömege: 27 000 Da 09.05.2018