Ion-eloszlás, transzmembrán potenciál μi = μistd + RT ln ai Kémiai potenciál Elektrokémiai potenciál Nernst Goldman-Hodgkins-Katz Szemipermeábilis membránon át egyensúlyi ioneloszlás (egyensúlyi potenciál kb), ha az ionok szabadon mozoghatnak a membránon át (Nernst) Zárt ioncsatornák; működő ionpumpák, transzporterek: adott ion mozgása „gátolt” : p=permeábilitást jellemző faktor (Goldman-Hodgkins-Katz)

RMP [mV] IR -57 - -77 mV 138 ± 6.9 MΩ 54 ± 33 MΩ 15-20 GΩ -65 mV Alvarez-Buylla et al., 2001, Nature Reviews Neurális Őssejt (NE-4C) Radiális glia VZ: E12-18 Asztroglia, SVZ felnőtt Fiatal Neuron cortex (E18) RMP [mV] IR -57 - -77 mV 138 ± 6.9 MΩ 54 ± 33 MΩ 15-20 GΩ -65 mV -25 - -70 mV 34,4 ± 2,7 MΩ - 85 mV Noctor, 2002 Bordey, 2007 Owens, 1996 Jelitai, 2007

Időben-térben változó cx. kifejeződés 6 db Connexin → connexon (hemichannel) 1 kDa-ig átjárható Permeabilitás, feszültségfüggés: cx összetétel Posttranslációs módosítások, foszforilációs folyamatok Pannexinek Px1, Px2 Söhl, Nature Reviews 2005 Időben-térben változó cx. kifejeződés Sejttipusonként változó cx. kifejeződés Neuronális: cx36, cx32, cx.26, cx43, cx45, cx57 Asztroglia: cx43, cx26, cx30 Oligodendroglia: cx29, cx32, cx47 Neurális progenitorok: cx43, cx36, cx26, cx45, cx46, cx37

Gap Junction Funkciók GJ Ca2+ hullám generálás VZ: ATP ürülés P2Y1 R aktiválódik a szomszédokon IP3 mediált Ca2+ ürülés a raktárakból Ca2+ hullám ν, méret, távolság növekszik fejlődés során E16 rat: GJ block → S fázisba lépés csökkent VZ clusterei Felnőtt SVZ: GJ kapcsolt csoportok „Cx43 osztódó sejtek általános jellemzője” Fejlődés során kapcsoltság csökken (E15 rat) bFGF – cx43 upreguláció Posztmitotikus neuronok migrációja RG, RMS Fejlődő kéreg: aktivitás terjedés, szinkronizáció Elias, Kriegstein; TINS 2008

♦ ● Ős/progenitorsejtek: Gap Junction (GJ) kapcsoltak nagy, szimmetrikus, passzív konduktancia pass passD pass+VD I (nA) V (mV) Alexa Fl. h. 594 -70 +20 -160 ♦ pass (szimm. passive ionáram) ● 10 ms 1 nA passD + VD (voltage dependent) ▲ passD (passive decaying) Jelitai 2007

Passzív konduktancia a GJ kapcsoltságnak köszönhető Gap Junction Passzív konduktancia a GJ kapcsoltságnak köszönhető Szimm. Passzív ionáramú őssejt PassD+ VD (fesz függő csat.) őssejt + GJ blokkoló GRA + GJ blokkoló GRA Outward káliumáram mérhető VD csatornákat intracelluláris ion-változások aktiválják? GRA: 18b-glycyrrhetinic acid passD+VD: időben lecsengő passív konduktancia + feszültségfüggő ionáram

Neurális irányban elkötelezödő progenitorsejtek (RA2): Feszültségfüggő ioncsatornák Neurális irányban elkötelezödő progenitorsejtek (RA2): RA2 Alexa fl. h. 594 10 ms 0,1 nA feszültség függő ionáramok nestin Alexa 594 Merge LY RA2 10 ms 1 nA szimm. passzív ionáramú progenitor

Feszültségfüggő ioncsatornák Outward káliumáram kontroll I (pA) Vm (mV) 10 ms 0,4 nA Na+ RA2 Na+ TTX Na+ RA6 pA mV Inward rectifier káliumáram (KIR) I (pA) Vm (mV) kontroll Ba+ 10 ms 0.4 nA Nátriumáram (INa) ▲ 1 ms 0.1 nA

Feszültségfüggő ioncsatornák protoncsatorna N C Ős – káliumcsatorna N + C Hv1 Feszültségfüggő Inward rectifier Two-pore káliumcsatornák N C + N + C kálciumcsatorna nátriumcsatorna

Feszültségfüggő káliumcsatornák (75 gén) Szulfonil-urea receptor; Ic ATP/ADP szensiív K-csatorna

Feszültségfüggő káliumcsatornák (75 gén) TÍPUS INWARD RECTIFIER   TANDEM PORE=two-pore,KCNKX FESZÜLTSÉG AKTIVÁLT CALCIUM AKTIVÁLT AL-TÍPUS Kir1.x Kir2.x Kir3.x:GIRK Kir4.x Kir5.x Kir7.x Kir6.x: ATP-szenzitív K2P1.x-?: TREK TRAAK TASK TWIK TALK THIK Kv1.x-12.x Kv11.1=HERG (DR, ether-a-gogo related pot. ch, inward rectifier) Kv7.x: KCNQ (DR) Kv5.x, 6.x, 8.x, 9.x: modifier: önállóan nem alkot big konduc-tance: BK (100-300 pS) Intermedi-ate kond: IK (10-40pS) small kond: SK (4-14 pS) Kv1.1-3, 1.5-3.2: Delayed Rectifier Kv1.4, 3.3-4.3:A-type = transient outward SZER-KEZET Alegy-ség  4x 2tm (M1-M2) domén 4x 2tm (M1-M2) domén + SUR 2x 4tm domén 4x 6tm (S1-S6) domén, S4 a feszültségszenzor +béta alegység (intracellulásisan) 4x 6tm (S1-S6) (+S0 BK-ban) domén, hosszú C-terminális + béta alegység (2tm) ÁLT. JEL-LEM-ZŐK 15-30pS, -65 mV alatt van nyitva, membránpot stabilizálása, [K+]extracell csökkentése, neuron, szív 25-80 pS, ATP gátolja csatorna nyitását, SUR receptor érzé-keli, pancre-as, izom, ér, szív, agy 5-70 pS, Nyugalmi membrán-potenciál stabilizálás, háttér K-áram, open rectifier A-type:20 pS, gyors aktiváció és inakt. Akciós pot. felfutás gátló DR: 5-27 pS, delayed rect. Lassú aktiváció+ ’nincs’ inakt. Akciós pot. lefutás elősegítés KCNQ: 5-7 pS, M-áram: lassú aktiváció+inakt, ingerlékenység befolyásolása Akciós pot. repolari-zációt segíti 0.4 M [Ca2+ic] aktiválja SM: spike trainek után after-hiperpolarizáció FESZ. ÉRZÉ-KENY-SÉG erős, befelé rektifikál , de nincs feszültség-szenzor! enyhe, befelé rektifikál enyhe, kifelé rektifikál van nincs N C + 4 x 2 x

Feszültségfüggő Outward Káliumáramok (Kv) K+ ionáramok Feszültségfüggő Outward Káliumáramok (Kv) Delayed Rectifier Káliumáram „A” - tipusú Káliumáram pA pA kontroll kontroll TEA 4-AP mV mV TEA: Tetraethylammonium chloride 4-AP: 4-aminopyridine

VD Na+ csatornák E12 mouse Albrieux et al, 2004 E12 mouse Calretinin pozitiv sejtek funkcionális Na csatorna, reelin pozitív sejtek 41 % Na áram Nav1.3

Na áram előbb mint Tubulin Főleg CP sejtjei, migráló prekurzorok E14 rat VZ VD Na+ csatornák Na áram előbb mint Tubulin Főleg CP sejtjei, migráló prekurzorok Embrionálisan SCN3/ Nav1.3 TTX sensitive Nem kapcsolt A sokszorosan kisebb Na áram lefutása hosszabb Bahrey, Moody, 2003

Cl- ionáramok IC klorid koncentráció E16 VZ: 37 mM, CP: 29 mM E19 CP: 24 mM P0: 19 mM P16: 12 mM IC klorid koncentráció Owens et al, 1998 Blaesse et al., 2009

Cl- ionáramok ClC2 E15 CP truncated forma Cl- channels:Br J Pharmacol. Nov 2009; 158(Suppl 1): S130–S134. Nilius, Droogmans, 2003 ClC1-7, ClCKa, ClCKb ClC2 E15 CP truncated forma NKCC1 embrionális fejlődés során megjelenik KCC2, KCC3 GABA switch NCBE: E12, KCC2 előtt Klorid ATP-áz E18 kimutatható

IC: KCl → Kgluconate EC: NaCl → Nagluconate Feszültségfüggő kloridáram Cl- ionáramok 4C RA4 IIIb tubulin Dapi NKCC1 30 µm 4C RA10 50 µm Dapi NKCC1 IC: KCl → Kgluconate EC: NaCl → Nagluconate Kloridion mentes EC oldat Feszültségfüggő kloridáram

Jelitai; 2010

mES sejteken, VZ, irsz. iniciálásában szerepe van a Ca fluktuációnak Ca2+ homeosztázis mES sejteken, VZ, irsz. iniciálásában szerepe van a Ca fluktuációnak IC Ca raktárak receptorai előbb funkcionálisak, mint VD Ca ioncsatornák IP3R-ok előbb működőképesek, mint RyR-ok ER Ca2+-ATP-áz nagyon korán funkcióképes Plazmamembrán Ca2+ pumpák, Na+/Ca2+ exchanger hamar működőképes és fenntartják az IC alacsony Ca szintet

Ca2+ ionháztartás Kezdetben „spontán” oszcillációk Később VD, Ligand-függő ioncsatornák műk. EC: L,N, P/Q,R, T ioncsatornák IC: IP3R, RyR E12 kifejeződnek, neurogenezis, osztódás szabályozása L type: blastula, grastula, irsz. iniciálása Fejlődésbeni folyamatok fontosak Ca2+ ionháztartás IP3R1,2,3 mRNS E11; E13 fehérje VZ-MZ különböző, funkció E13-tól VZ, CP RyR1,2,3 mRNS, fehérje E13-tól, funkciót csak PP-ben (E13) Egyedi sejtek Ca2+ fluktuáció, független Szomszédos sejtek párban, szinkron Ca2+ válasz Sejt clusterek, szinkron koordinált Ca2+ fluktuáció